【合成生物学】山东大学合作Angew：自抗性基因导向的脂肪酸合成酶抑制剂cerulenin的生物合成- 大数跨境

【合成生物学】山东大学合作Angew：自抗性基因导向的脂肪酸合成酶抑制剂cerulenin的生物合成

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2024-10-28

导读：山东大学药学院尚卓课题组、西澳大学Yit Heng Chooi课题组和麦考瑞大学Andrew Piggott课题组合作在Angew. Chem. Int. Ed.杂志上首次报道了明星分子cerulen

Cerulenin（1）是首个天然来源的脂肪酸合成酶（FAS）抑制剂，它由2015年诺贝尔生理或医学奖得主大村智（Ōmura Satoshi）从真菌Cephalosporium caerulens（后被修正为Sarocladium oryzae）的发酵液中提取分离得到，具有显著的抗细菌、抗真菌和抗肿瘤活性。Cerulenin结构中含有一个亲水的顺式环氧基团和一个疏水的7E,10E-壬二烯基尾部；在质子溶液中，可以发生分子内5-exo-trig环化反应（图1）。2008年，Grininger课题组解析了cerulenin和酿酒酵母FAS α亚基的共晶结构，发现该分子的C-2/C-3环氧基团开环后与FAS α亚基酮脂酰合成酶结构域（KS domain）中第1305位的半胱氨酸巯基共价结合，从而抑制FAS活性（图1）。2024年，Burkart课题组通过同位素标记结合质谱和核磁实验，揭示了cerulenin与FAS半胱氨酸结合时发生了C-2/C-3逆醛醇键断裂（retro-aldol bond cleavage）和分子重排反应。此外，研究表明cerulenin可以减少小鼠进食量，增加其能量消耗，具有与瘦素leptin相似的减肥效果，因此被作为减肥药开发；但因其存在给药后体重急剧下降和厌食症等全身性不良反应，其临床应用受到限制。Cerulenin也是拓扑异构酶I抑制剂，促进肿瘤细胞凋亡，同时它作为探针分子被广泛应用于细胞生物学研究。

图1. Cerulenin的化学结构及其通过与酿酒酵母FASα亚基结合发挥抗真菌活性示意图。图片来源：Angew. Chem. Int. Ed.

尽管cerulenin的化学结构和生物活性被广泛研究，但cerulenin的生物合成从未被报道，仅有个别文献推测cerulenin源于脂肪酸合成途径。有意思的是，自cerulenin于上世纪60年代被发现以来，从未有结构类似物被报道，属于“孤儿分子”。近日，山东大学药学院尚卓课题组、西澳大学Yit Heng Chooi课题组和麦考瑞大学Andrew Piggott课题组合作在Angew. Chem. Int. Ed.杂志上首次报道了明星分子cerulenin的生物合成途径。

作者首先采用LCMS分析了S. attenuatum MST-FP2084和S. oryzae MST-FP2085的发酵提取物，确定这两株Sarocladium属真菌可以生产cerulenin (1)。从含有1% (w/v) XAD-16树脂的酪蛋白甘油培养基发酵液中分离得到了化合物1，并通过NMR鉴定了化合物1的化学结构。为了研究1的生物合成，作者对这两株真菌进行了全基因组测序、组装和生物合成基因簇预测。分析化合物1的化学结构，作者推测其生物合成基因簇可能编码包含高度还原的I型聚酮合酶(HR-PKS)、酰胺转移酶、细胞色素P450氧化酶等基因。考虑到1可以与真菌FAS共价结合产生抗真菌活性，作者推测cerulenin的生产菌株可能进化出“自抗性基因”以抵消cerulenin对自身的毒性，“自抗性基因”为真菌FAS α亚基的同源基因。为了从16个预测的PKS基因簇中快速定位cerulenin基因簇，作者通过生物信息学分析从两株真菌中寻找到了编码FAS的管家基因（包含FAS α亚基和β亚基），然后根据FAS α亚基的序列，从MST-FP2084的scaffold 176和MST-FP2085的scaffold 144上找到了编码FAS α亚基自抗性蛋白的“自抗性基因”，与管家基因的相似度为65%。更重要的是，两株菌的“FASα自抗性基因”上游都有一个包含11个基因的HR-PKS生物合成基因簇（命名为cer），推测其最有可能负责cerulenin的生物合成。接下来，作者对cer基因簇中的各个基因进行了功能注释，其中HR-PKS基因（cerA）编码多结构域的I型PKS，包括聚酮合酶（KS）、酰基转移酶（AT）、脱水酶（DH）、烯酰还原酶（ER）、酮还原酶（KR）和酰基载体蛋白（ACP）结构域。MST-FP2084和MST-FP2085菌株中cer基因簇具有99%的同源性（图2A）。随后，作者预测了位于cerA和cerI之间的基因所编码的蛋白质功能，包括谷氨酰胺转移酶（CerD）、硫酯酶（CerB）、2个氧化还原酶（CerC和CerE）、FAD依赖的氧化酶（CerF）、2个细胞色素P450单加氧酶（CerP1和CerP2）、细胞色素b5（CerJ）、转运蛋白（CerG）以及一个功能未知蛋白（CerH）（图2A）。另外，HR-PKS基因下游还有一个基因orf13编码一个单加氧酶。

图2. cer基因簇的鉴定和验证（A：cer基因簇的基因注释；B：表达cer基因簇的Aspergillus nidulans LO8030发酵物的LC-MS分析）。图片来源：Angew. Chem. Int. Ed.

为了验证cer基因簇是否负责1的生物合成，作者在构巢曲霉Aspergillus nidulans LO8030中重构了cer的生物合成基因簇，将自抗性基因cerI与簇内其他基因共表达，在培养时添加XAD-16树脂以吸附并稳定化合物1。LCMS分析结果显示，组合cerABCDEFGHIJP₁P₂可生产化合物1，而加入基因orf13后并未检测到除1以外的新产物，表明cerABCDEFGHIJP₁P₂负责1的生物合成，且基因orf13不参与1的生物合成（图2B）。为了进一步阐明1的生物合成途径，作者构建了包含不同cer基因组合的过表达质粒，转入A. nidulans LO8030中进行异源表达。首先，从cerAB共表达菌株的乙酸乙酯提取物中鉴定了C8:3不饱和脂肪酸6、八元环聚酮7和具有6/4环结构的化合物 8-9，推测7-9是由C12:5（4）和C10:4（5）多不饱和脂肪酸通过自发电环化反应形成（图3B）。为了寻找cerAB共表达的真正产物，作者将XAD-16树脂加入到表达cerAB的构巢曲霉培养基中。作者从树脂的丙酮洗脱液中分离得到了主产物4，它和1都具有12个碳原子，同时也检测到了5和6（图3A），这表明电环化产物是自发形成的分流产物。尽管不稳定，作者仍然通过HRMS和NMR阐明了4的结构，结构中含有4个顺式双键和1个反式双键。

图3. 聚酮中间体4和5的异源表达和非酶转化。图片来源：Angew. Chem. Int. Ed.

为了阐明化合物4下游的生物合成途径，作者将cerAB和其他基因逐一共表达，发现只有共表达cerABD组合时可产生新的中间体多烯酰胺（10）（图3A），其绝对构型和4保持一致，这表明了基因cerD催化脂肪酸酰胺化。作者通过体外酶反应，进一步证明了无机铵离子和L-谷氨酰胺可作为CerD催化的酰胺化反应的氮供体（图5A）。接下来，cerABD与其他基因逐一共表达时没有检测到任何新的中间体生成。但有意思的是，共表达cerABDJP₂或cerABDJP₁P₂导致前体10消失，作者推测CerP₂和CerJ可能催化下一步反应，但由于产物的不稳定性导致LCMS未能检测到任何产物。因此，作者改变了研究策略，通过从完整的cer基因簇中逐个删除基因来研究每个基因的功能（图4A）。对含有cerABCDEFJP₁P₂（∆cerGHI）和cerABCDEFGIJP₁P₂（∆cerH）基因组合的A. nidulans LO8030树脂提取物进行LC-MS分析，均检测到1的存在，表明转运蛋白CerG、自抗性蛋白CerI和假设蛋白CerH不直接参与1的生物合成。另外，作者在∆cerGHI发酵提取物中还分离得4个cerulenin类似物（11−14），通过HRMS和NMR鉴定了结构，推测是构巢曲霉宿主还原∆²双键后形成的分流产物（图4B）。∆cerD菌株累积了含有五元内酯结构的中间体19和20，逆生物合成分析推测19和20是化合物4经过CerP₂J催化的Δ⁴环氧化和自发开环酯化产生（图4B）。为了确定CerP₁或CerP₂是否参与Δ⁴环氧化，作者对表达完整cer基因簇但缺少cerP₁、cerP₂、cerJ或其组合的构巢曲霉发酵提取物进行了LC-MS分析。结果表明，在ΔcerP₂、ΔcerJ、ΔcerJP₁、ΔcerJP₂和ΔcerJP₁P₂菌株中积累了多烯酰胺10，而ΔcerP₁菌株产生12，推测是由C-4/C-5环氧化物中间体产生的分流产物。∆cerEF菌株的主产物为中间体15，次要产物包括化合物16−18。作者推断17和18是由C-4/C-5环氧酰胺（Ⅰ）中间体经过CerC催化的双键迁移和CerP₁J催化的∆^2,3环氧化反应得到的（图4B）。

图4. 不同cer基因组合在构巢曲霉中的异源表达，以及基于体内体外实验构建的cerulenin（1）生物合成途径。图片来源：Angew. Chem. Int. Ed.

接下来，作者推测CerF可能催化关键生物合成中间体15的4位羟基氧化为酮，CerE还原∆⁵双键，生成终产物1。由于FAD依赖的氧化酶CerF去除信号肽后失去催化活性，氧化还原酶CerE可能为膜蛋白，于是作者将15与表达cerF的构巢曲霉细胞裂解液共孵育，通过LC-MS分析检测到化合物23的生成，证实了CerF具有氧化4位羟基为酮基的功能（图5）。然后，将15与共表达cerEF的构巢曲霉细胞裂解液反应，检测到终产物1的生成，证实了CerE作为一种烯酰还原酶，具有还原∆⁵双键的功能（图5）。通过构建多基因缺失组合，作者共分离鉴定了cerulenin生物合成中间体或者副产物18个，均为新化合物。

图5. 体外实验验证CerD、CerE和CerF的催化功能。图片来源：Angew. Chem. Int. Ed.

通过异源表达和体外实验，结合中间体和副产物的化学结构，作者提出了cerulenin（1）的生物合成途径：聚酮合酶CerA和硫酯酶CerB负责C12骨架的合成，形成具有2Z,4E,6Z,8Z,10Z构型的多不饱和脂肪酸中间体4，随后经过酰胺转移酶CerD的催化生成多烯酰胺10。10中的∆⁴双键被细胞色素P450单加氧酶CerP₂与细胞色素b₅ CerJ共同催化生成中间体（Ⅰ）。随后在CerC的催化下环氧开环、6Z,8Z双键迁移并异构化、10Z双键异构化，形成具有2Z,5E,7E,10E结构的中间体（II）。接下来，另一个细胞色素P450单加氧酶CerP₁环氧化中间体（II）的∆²双键，生成关键中间体15。15中的4位羟基被FAD依赖的氧化酶CerF氧化成酮，再由CerE还原∆⁵双键，得到终产物cerulenin（1）。另外，作者也归纳了另外3条cerulenin生物合成过程中的旁路途径（shunt pathway）。

综上所述，作者利用自抗性基因导向的基因组挖掘、异源表达和XAD-16树脂吸附策略，发现并验证了两株Sarocladium真菌中负责cerulenin（1）生物合成的cer基因簇，并在构巢曲霉中实现了cerulenin合成途径的异源重构，首次揭示了cerulenin的生物合成途径。从具有E和Z混合构型的C12聚酮前体开始，涉及一系列复杂的酰胺化，环氧化，双键迁移，E/Z异构化和环氧开环等过程。通过体外反应，验证了氨基转移酶CerD、氧化酶CerF和还原酶CerE的功能。这是自60多年前发现FAS抑制剂以来，首次揭示cerulenin生物合成的分子基础，为cerulenin的工程化改造和放大生产提供了基础。

原文（扫描或长按二维码，识别后直达原文页面）：

Self-Resistance Gene-Guided Discovery of the Molecular Basis for Biosynthesis of the Fatty Acid Synthase Inhibitor Cerulenin

Zhuo Shang*, Amr A Arishi, Changzheng Wu, Fangzheng Lao, Cameron L M Gilchrist, Stephen A Moggach, Ernest Lacey, Andrew M Piggott*, Yit-Heng Chooi*

Angew. Chem. Int. Ed., 2024, DOI: 10.1002/anie.202414941

尚卓教授简介

尚卓，山东大学教授，博士生导师，山东大学齐鲁青年学者（第一层次），2022年山东省海外优青获得者。2016年毕业于澳大利亚昆士兰大学，先后在加州大学圣地亚哥分校、洛克菲勒大学、南卡罗莱纳大学和西澳大学从事微生物活性天然产物的挖掘、生物合成和作用机制的研究工作。2022年6月加入山东大学药学院，依托“天然药物和海洋药物化学生物学交叉创新团队”（团队PI：鞠建华教授，国家杰青）开展研究工作。尚卓课题组主要从事微生物活性天然产物的研究，旨在通过生物信息学、分子生物学、天然产物化学、合成生物学和高通量筛选等多种交叉学科手段，挖掘新颖的微生物天然药源分子、解析其生物合成机制和作用机理，推动抗感染和抗肿瘤药物先导化合物的开发。迄今为止，以第一作者和通讯作者身份在Angew. Chem. Int. Ed.、J. Am. Chem. Soc.、Nat. Commun.等期刊发表研究论文42篇，承担国家级和省部级项目5项。担任Natural Product Reports、Organic Letters等13个国际同行评议学术期刊审稿人。详情可见个人主页：

https://www.pharm.sdu.edu.cn/info/1058/13700.htm

因科研工作需要，尚卓课题组亟需招聘博士后和科研助理各一名，具体要求和待遇如下：

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【职位描述与要求】

1. 符合山东大学博士后招收的基本条件，博士毕业3年以内，有天然产物化学、微生物学、分子生物学专业背景者优先。

2. 具有较强的英语读写能力和团队协作精神，以第一作者身份在国际同行评议杂志上发表研究论文至少1篇。

3. 在合作导师的指导下，独立开展科研工作和科研项目的申报。

4. 能保证在山东大学药学院连续从事博士后研究工作不少于21个月。

【应聘方式】

申请人请将个人简历（包括个人学习、工作和研究经历）和代表性论文的pdf文件发送至 zshang@sdu.edu.cn，邮件标题注明“应聘-博士后-姓名”。应聘材料将予以严格保密，经初步审核通过者，课题组将尽快安排面试。其中特别资助类博士后申请以学校的申报要求为准。

二、科研助理招聘

【职位描述与要求】