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【干货篇】高通量DNA甲基化芯片:手把手教你解锁表观遗传密码的实验步骤!

【干货篇】高通量DNA甲基化芯片:手把手教你解锁表观遗传密码的实验步骤! 晟千生物科技
2025-08-20
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导读:高通量DNA甲基化芯片实验步骤导语高通量DNA甲基化芯片在癌症、神经退行性疾病等复杂疾病的表观遗传研究中,DN

高通量DNA甲基化芯片

实验步骤


导语

高通量DNA甲基化芯片

在癌症、神经退行性疾病等复杂疾病的表观遗传研究中,DNA甲基化作为基因表达的“开关”,其异常调控往往早于病理表现。高通量DNA甲基化芯片技术凭借百万级位点检测、单碱基分辨率的优势,已成为揭示疾病机制、发现生物标志物的核心工具。本文将从实验原理、目的到操作细节,为你提供一份可落地、避坑指南式的实验方案。


ONE


实验原理

⬇⬇⬇

DNA甲基化芯片的核心是亚硫酸氢盐处理+特异性探针杂交的双重技术,通过荧光信号量化甲基化水平。


案例参考:

在肝癌研究中,通过Infinium MethylationEPIC芯片发现,抑癌基因RASSF1A启动子区Beta值在肿瘤组织中较正常组织升高0.35(P=0.001),提示高甲基化可能抑制基因表达。


TWO


实验目的


从基础到临床的三大应用场景:


1

疾病机制挖掘

 • 肿瘤研究:识别癌症驱动基因的甲基化异常(如结直肠癌中MLH1基因启动子高甲基化导致错配修复缺陷)。


  • 神经疾病:解析阿尔茨海默病中APP基因甲基化与淀粉样蛋白沉积的关联。


2

生物标志物开发

  • 早期诊断:通过血浆游离DNA甲基化图谱,实现肝癌的无创筛查(AUC>0.9)。


  • 预后评估:乳腺癌患者中BRCA1甲基化水平与化疗耐药性显著相关。


3

药物机制研究

  • 表观遗传药物筛选:检测DNMT抑制剂(如5-Azacytidine)对全基因组甲基化的重编程效应。


  • 副作用评估:分析免疫检查点抑制剂是否诱导免疫相关基因的异常甲基化。




THREE


实验用品



1

细胞与生物样本



• 人永生化肝细胞系 L02
• 人肝细胞癌细胞系 Huh7



2

主要试剂与试剂盒



• DNA 提取试剂盒

• 亚硫酸氢盐转化(甲基化修饰)试剂盒

• Infinium Human Methylation 450 K BeadChip 芯片及配套杂交

• 扫描试剂





(DNA 提取试剂盒)

( 亚硫酸氢盐转化试剂盒)



3

主要仪器与软件



• NanoDrop 核酸蛋白分析仪 —— DNA 浓度与纯度测定
• Eppendorf 微量离心管及常规离心设备 —— 样品分装与离心
• iScan 芯片扫描仪 —— 450 K 芯片荧光信号扫描
• GenomeStudio Methylation Module v1.9 软件 —— 原始数据读取、β 值计算及差异甲基化初步分析





(核酸蛋白分析仪)

(离心机)






FOUR


实验步骤


1

细胞培养与样本准备

1




将人永生化肝细胞 L02 和人肝细胞癌细胞系 Huh7 复苏后,分别接种于含 10 % FBS 的 DMEM 培养基,37 °C、5 % CO₂ 培养至对数生长期。

2




PBS 洗涤 2 次,0.25 % 胰酶消化,收集 1 × 10⁶ 个细胞/样本,PBS 重悬后 1 000 × g 离心 5 min,弃上清备用。


2

基因组 DNA 提取


1




按 QIAamp DNA Micro Kit 说明书,在 1.5 mL Eppendorf 管中裂解细胞并过柱纯化。

2




用 50 µL AE 缓冲液洗脱,获得基因组 DNA。

3




NanoDrop 测定浓度及 OD₂₆₀/OD₂₈₀,仅保留 1.7–2.0 之间样本;不合格者重新提取。



3

亚硫酸氢盐转化(甲基化修饰)


1




取 500 ng 合格 DNA,按沈阳百创特甲基化修饰试剂盒操作:
 • 变性 98 °C 10 min → 亚硫酸氢盐处理 60 °C 2 h → 纯化柱回收。

2




终体积 20 µL,转化后 DNA 立即使用或 –20 °C 保存。


4

Illumina Infinium 

450 K BeadChip 实验


1




全基因组扩增:将 4 µL 转化后 DNA 与 MA1、MA2 混合,37 °C 20–24 h。

2




片段化: 加入 FMS 37 °C 1 h 酶切片段化。

3




沉淀与重悬:加入 PM1 和 2-丙醇沉淀 DNA,离心弃上清,加入 RA1 重悬。

4




芯片杂交:
 • 取重悬 DNA 与 HM 杂交缓冲液混匀,95 °C 20 min 变性;
 • 每样本 10 µL 上样至 450 K BeadChip 反应室,48 °C 16–24 h。

5




单碱基延伸与染色:依次加入 XStain BeadChip 试剂盒中的延伸、染色、稳定化试剂,室温/37 °C 按手册执行。

6




扫描: iScan 系统扫描芯片,生成 .idat 原始文件。


5

数据处理与差异甲基化分析


1




使用 Illumina GenomeStudio Methylation Module v1.9 读取 .idat 文件,导入 manifest 文件,计算 β 值:
 β = M / (M + U + 100)。

2




导出 β 值及检测 P 值矩阵。

3




差异甲基化位点(DMP)筛选:
①empirical Bayes moderated t-test(limma),Bonferroni 校正;
②校正后 P (adj. P) ≤ 0.05 且 |Δβ| ≥ 0.2;
③CpG 覆盖度 ≥ 95 %。

4




进一步高置信度过滤:
 • adj. P ≤ 0.05 且 P ≤ 1.06 × 10⁻⁷;
 • 高甲基化:Δβ > 0.2 且 L02 β < 0.25;
 • 低甲基化:Δβ < –0.2 且 Huh7 β < 0.25。

5




结果导出:显著差异 CpG 列表用于后续 GO/KEGG 及网络分析。


FIVE


注意事项


高通量DNA甲基化芯片的实验成功,取决于样本质量、操作标准化、数据分析严谨性的三重保障。通过优化亚硫酸氢盐转化条件、严格控制杂交参数,并结合生物信息学工具深入挖掘数据,可高效识别疾病相关甲基化标志物。




高通量DNA甲基化芯片的实验虽然简单,但每一个细节都可能影响实验结果的准确性。希望这篇文章能帮助你在实验中更加得心应手,探索DNA甲基化芯片

如果您有任何疑问或建议,欢迎在评论区留言哦!我们下次再见!

最后,关注我,小编还会持续输出的。


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END

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