基因治疗是指利用分子生物学方法将外源目的基因(DNA/RNA)导入靶细胞,以纠正或补偿因基因缺陷或异常引起的疾病;或通过向细胞内导入核酸以沉默或激活目的基因,从而达到治疗目的。
LC-MS在基因治疗产品中的应用
AAV衣壳蛋白的表征
重组腺相关病毒(rAAV)因其具有毒性低、靶向性强、表达能力持久等优势已成为基因治疗领域中最为广泛关注的病毒载体之一。[3] AAV的衣壳主要由VP1、VP2和VP3组成,比例约为1:1:10,质量范围介于50-85 kDa之间。已有研究表明,AAV衣壳组成是影响病毒感染活性和基因转导的关键因素。[4, 5] 在FDA发布的CMC指南中,提出了需对AAV衣壳蛋白进行全面表征,包括衣壳的鉴别、衣壳纯度、序列和翻译后修饰(PTM)等。[6]
由于AAV样品滴度限制,用于后续表征的衣壳蛋白量相对有限,LC-MS能够通过单个/次表征分析获取诸多的质量属性信息,如衣壳VP蛋白的比例和纯度、衣壳蛋白覆盖率及PTM等。博腾生物搭建了完善的分析表征平台可用于rAAV产品的全面表征分析,图1是AAV9变性衣壳蛋白的TIC图谱及VP蛋白分子量结果,在TIC图谱中可以看到3种VP蛋白的比例和纯度,VP3蛋白的异构体和截断形式,通过去卷积获取的准确分子量可以用于衣壳蛋白的鉴别。此外,测定变体的准确质量数有助于对VP蛋白上潜在的PTM进行归属,如图中的磷酸化修饰。
图1 AAV9变性衣壳蛋白的TIC图谱及VP蛋白分子量结果
在对VP蛋白进行鉴定的基础上,通过LC-MS/MS可以对VP蛋白进一步表征,包括序列覆盖度、PTM鉴定和未知峰/杂质(如HCP)鉴定等。如图2所示,采用胰蛋白酶(trypsin)对AAV9衣壳蛋白VP1酶切后进行肽图分析,可以获得86%的序列覆盖度;并对潜在的PTM进行鉴定,包括N-端乙酰化、磷酸化和氧化等修饰。由于trypsin酶切位点在AAV衣壳蛋白序列中的限制性,使用trypsin难以获得100%的VP1蛋白序列覆盖,为了获得更高的蛋白序列覆盖率,可考虑与其它酶(如胃蛋白酶(pepsin))联合使用的方法进行酶切处理。 [7]

图2 AAV9的VP1序列覆盖图及高质量MS/MS图(Trypsin酶切)
(图谱源于博腾生物表征平台)
mRNA加帽率及poly(A)尾分析检测
相比传统疫苗,mRNA疫苗成本低、研发灵活性高、生产效率高,且具有相对较高的安全性。[8] 对于此类新型疫苗,需严格的质量控制以确保产品的安全性。因此,为了进一步加强对mRNA类基因治疗产品的质量控制,NMPA发布了“体外基因修饰系统药学研究与评价技术指导原则(试行)”,美国药典(USP)发布了关于“mRNA疫苗质量分析方法的指南草案”等指导文件。这些指导原则明确对mRNA不同区域结构的完整性提出了要求,如5'-Cap帽或帽类似物结构和poly(A)长度及分布等。
在mRNA工艺生产中采用2种类型的加帽方式:酶法加帽和共转录加帽。酶法加帽反应的终产物是m7GpppmGpG-RNA,中间产物包括m7GpppGpG-RNA,ppGpG-RNA,pGpG-RNA以及GpppGpG-RNA等;共转录加帽反应的终产物是m7GpppmGA-RNA。大多数研究数据显示酶法加帽的效率要优于共转录加帽,但酶法加帽存在诸多的中间产物,对mRNA产品加帽率的分析和控制方法提出了更高的要求。LC-MS由于其高分辨率、高灵敏度及高质量精度等优势,已成为表征评估mRNA加帽率及加尾分析的有效手段之一。
图3是博腾生物表征平台利用LC-MS对共转录加帽反应的mRNA样品进行加帽率检测的TIC图谱。全长的mRNA由于分子量太大而无法得到精确表征,通常会使用酶切方式获得5’端的加帽或未加帽结构的寡核苷酸片段后再进行LC-MS检测。[9] 图3中Rt 6.71min对应的是酶切获得的寡核苷酸片段,通过对加帽或未加帽结构的组分进行质谱峰面积定量,从而可以得到5’加帽比例。

图3 mRNA样品加帽率检测的TIC图谱及加帽或未加帽组分列表
(图谱源于博腾生物表征平台)
mRNA的3’端poly(A)尾结构可以让mRNA在细胞中免受核酶的降解,增强mRNA的稳定性,同时poly(A)结构长度可以控制转录效率。图4为mRNA样品不同长度的poly(A)质谱图及分布图,可以看出,LC-MS可以准确的检测mRNA尾部poly(A)的长度及不同长度A的占比。

图4 mRNA样品不同长度的poly(A)质谱图及分布图
(图谱源于博腾生物表征平台)
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