
传统的基因组编辑方法通常需要使用限制性内切酶或转录翻译活化因子等工具,或是引入外源的DNA序列,才能实现对基因组的编辑。这些方法可能会导致难以预测的不良影响,且在某些细胞类型中的应用效果不佳。为了解决这些问题,来自哈佛大学的刘如谦团队在Nature上发表了一篇名为Search-and-replace genome editing without double-strand breaks or donor DNA的文章,提出了一种名为“prime editing”的新型基因组编辑技术。
对于PE技术的可行性,作者通过体外细胞实验进行验证。首先,使用含有切口的dsDNA、dCas9、逆转录酶MMLV RT来测试这些候选pegRNA与逆转录的兼容性,发现底物可以发生延伸反应,并且随着逆转录模板长度的不同,产生与模板链长度相对应的延伸产物。这表明dCas9和MMLV RT能够在pegRNA的引导下结合到DNA切口处,并由后者引发带切口的DNA发生逆转录反应。当用传统的sgRNA取代pegRNA时,没有观察到DNA聚合产物(Fig.1 d)。接下来,作者用nCas9(H840A)测试了不含缺口的dsDNA,在适当的pegRNA作向导链和逆转录模板链的情况下,也可实现dsDNA切口和逆转录(Fig.1e)。为了评估由pegRNA逆转录产生的3’flap在体外的真核细胞DNA修复结果,作者用质粒进行PE编辑,并且将反应产物转化到酵母细胞中,结果表明DNA修复机制可解析PE产生的3’flap结构,实现精确的颠换、插入和缺失编辑(Fig.1e)。
Fig 1. Overview of prime editing and feasibility studies in vitro and in yeast cells
PE3/PE3b:在PE2基础上增加可引导切断非编辑链的sgRNA,PE3对HEK293T细胞中四种靶基因的编辑效率提高了1.5至4.2倍;PE3b是在PE3基础上对sgRNA序列进行优化(Fig.3a-c)。
Fig 2. Prime editing of genomic DNA in human cells by PE1 and PE2
Fig 3. PE3 and PE3b systems nick the non-edited strand to increase prime editing efficiency
Fig 4. Targeted insertions, deletions, and all 12 types of point mutations with PE3 at seven endogenous genomic loci in HEK293T cells
Fig 5. Prime editing of pathogenic mutations, prime editing in primary mouse cortical neurons, and comparison of prime editing and HDR in four human cell lines
珠海舒桐医疗科技有限公司长期致力于基因编辑领域,研发团队潜心研发,开发了一个高效的Suntag-PE系统,为优质编辑提供了高效的模块拆分策略,并进一步促进了其在临床上的转变。现该技术主要用于细胞点突变项目,如果您对此感兴趣,欢迎咨询!
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参考文献:
[1]Anzalone A V, Randolph P B, Davis J R, et al. Search-and-replace genome editing without double-strand breaks or donor DNA[J]. Nature, 2019, 576(7785): 149-157.
[2] Hu Z, Tian R, Liu J, et al. SunTag-PE: a modular prime editing system enables versatile and efficient genome editing[J]. bioRxiv, 2023: 2023.01. 13.524016.

