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圆二色谱CD:科研人最常用的结构分析神器,原理与实操全解读

圆二色谱CD:科研人最常用的结构分析神器,原理与实操全解读 迅迪实验室
2025-11-04
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一、原理概述

1.1 什么是圆二色谱(CD)

圆二色谱(Circular Dichroism, CD)是一种基于手性分子对左、右圆偏振光吸收差异的光谱技术。
当光波为圆偏振状态通过样品时,如果样品中存在手性结构(如蛋白质的螺旋结构、核酸的双螺旋等),它会对左圆偏振光(L)和右圆偏振光(R)的吸收不同,从而产生可测的信号。

其数学表达式为:

ΔA=AL − AR=(εL − εR)·c·l

其中:

  • AL、AR 分别为左、右圆偏振光的吸收;

  • εL、εR 为对应摩尔消光系数;

  • c 为样品浓度;

  • l 为光程长度。

在多数生物大分子研究中,CD 信号常用平均摩尔椭圆度(molar ellipticity,[θ])表示,与 Δε 的关系为:

[θ]=3298 × Δε


1.2 仪器与测量波段

典型 CD 光谱仪包括:
光源(氙灯)、单色器、偏振调制器(产生交替的左、右圆偏振光)、样品池室与检测器。仪器交替测量两种偏振态下的透过光差异,得到 CD 光谱。

                         结构示意图

按波长区分常见的三种测量区段:

  • 远紫外 CD(Far-UV, 170–250 nm):反映蛋白质主链结构,用于分析二级结构比例(α-螺旋、β-折叠、无规卷曲等)。

  • 近紫外 CD(Near-UV, 250–320 nm):揭示芳香族氨基酸或辅基环境信息,与三级结构相关。

  • 可见 CD(Visible CD):用于金属蛋白、染料或配体结合体系的构象研究。


1.3 原理要点

  • CD 信号来源于手性分子对左右圆偏振光吸收差异(ΔA)。

  • CD 信号极小,因此样品吸光度过高会掩盖真实信号。

  • 理想情况下,样品在测定波段的吸光度应控制在 0.6–1.0 OD 以内,以保持信噪比。

  • CD 光谱常用于研究蛋白折叠、构象变化、二级结构比例、配体结合及热稳定性等。


二、样品准备

2.1 样品浓度与类型

CD 常用于分析蛋白质、肽、核酸及其他手性小分子。
浓度需与光程匹配:

  • 若光程为 0.1 cm(1 mm),蛋白浓度一般在 0.1–1 mg/mL 范围较合适;

  • 吸光度过高会导致噪声上升,过低则信号微弱。
    建议通过紫外 280 nm 吸光度或 BCA 法测定浓度。


2.2 缓冲体系与溶剂

  • 远紫外 CD 对溶剂吸收非常敏感,应避免使用高吸收组分。

  • 推荐使用低吸收缓冲液(如 10 mM PBS、NaF、Tris 等),避免含有高浓度盐或强吸收成分(如 Cl⁻、DTT、甘油等)。

  • 若测量至 190 nm 以下,可使用更短光程池(0.05 cm)或更换为 D₂O 溶剂以减少吸收。

  • 对膜蛋白样品,需评估去垢剂或脂质的背景吸收。


2.3 光程池与测量条件

  • 常用石英池,光程 0.1 cm 或 0.2 cm。

  • 远 UV 测量宜用短光程(0.05–0.1 cm),减少吸光影响。

  • 池体需干净无划痕、无气泡,测前应以缓冲液清洗。

  • 温控可使用 Peltier 装置,以实现热变性或温度扫描实验。


2.4 样品准备要点

  • 样品应澄清透明,避免沉淀或悬浮颗粒。

  • 测前可进行透射检查,确认目标波长处透光良好。

  • 各条件(浓度、缓冲、温度)尽量保持一致,以便比较。


三、数据测定与处理

3.1 测定规划

根据实验目的确定扫描范围、步长与温度控制。例如:

  • 二级结构分析:190–260 nm;

  • 热变性实验:监测 222 nm 随温度变化;

  • 配体结合实验:比较配体加入前后的光谱形状。


3.2 数据采集

  1. 扫描缓冲液背景,记录空白谱。

  2. 测样本谱,确保无气泡、无漂移。

  3. 多次扫描取平均值以提高信噪比。

  4. 记录 HT 值(高压电压)或透光率,避免超限区段。


3.3 背景校正与单位换算

用样本谱减去空白谱,即为纯 CD 信号。
随后将观测椭圆度(θobs)换算为平均摩尔椭圆度

[θ]=(θobs × 100 × M) ÷ (c × l)

其中:

  • θobs 为观测椭圆度(mdeg);

  • M 为分子量(g/mol);

  • c 为样品浓度(g/L);

  • l 为光程(cm)。

建议报告单位为 deg·cm²·dmol⁻¹,以便与文献数据比较。


3.4 二级结构分析

典型蛋白质 CD 光谱特征如下:

  • α-螺旋:208 nm 与 222 nm 处负峰;

  • β-折叠:约 217 nm 负峰;

  • 无规卷曲:195–200 nm 负峰。

可使用软件(如 CAPITO、CDtoolX)拟合 α-螺旋、β-折叠及无规卷曲比例。
比较不同条件(pH、配体、突变体)下光谱形状,即可判断构象变化。

                                       α-螺旋,β-折叠


3.5 热变性与稳定性分析

监测单一波长(如 222 nm)随温度变化,可绘制热变性曲线
曲线呈“S”型时,中点温度即为蛋白折叠-展开转变温度(Tm)。
若样品在高温下聚集或浑浊,应重复实验验证可逆性。


3.6 结果展示与报告

在报告或公众号中常用两类图示:

  1. CD 光谱图:椭圆度 vs 波长曲线,标出 α-螺旋、β-折叠峰位。

  2. 热变性曲线:温度 vs 椭圆度,标注 Tm。

报告建议包含:样品浓度、光程、缓冲体系、测量温度与重复次数,以增强结果可比性。


四、常见误区与建议

常见误区
后果
建议
样品浓度过高
吸光度过大,噪声升高
保持 OD<1
忽略缓冲吸收
光谱失真、低波长数据错误
使用低吸收缓冲液
不重复扫描
信噪比差、数据漂移
建议重复3次取平均
只看单波长
信息不足
建议全谱扫描
未报告参数
难以复现
记录浓度、光程、温度、带宽

五、应用场景举例

  • 蛋白折叠判断:纯化后检测是否形成 α-螺旋结构。

  • 突变体比较:分析结构差异或稳定性变化。

  • 配体结合分析:观察结合引起的结构重排。

  • 热稳定性研究:确定蛋白 Tm 值。

  • 核酸构象分析:区分单链与双螺旋状态。

  • 药物质量控制:评估生物制剂的高阶结构一致性。

                                         不同样品的对比


六、小结

圆二色谱是一种灵敏且非破坏性的结构分析手段。
通过合理的样品准备、参数设置与数据处理,可快速获得蛋白或核酸的二级结构信息、构象变化及热稳定性。
在科研、药物开发与结构生物学中,CD 光谱法都是一项重要的基础工具。





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