引言：
在蛋白质电泳实验中，预制胶因其便捷性、稳定性和高重复性，已成为许多实验室的首选。ACE的FuturePAGE™蛋白预制胶凭借其优异的分离效果和广泛的适用性，深受科研工作者的青睐。
图片客户反馈来源：小红书
然而，在实际使用过程中，可能会遇到一些技术问题，例如：胶体保存条件不当、上样量需要优化、电泳条件选择不合适，或者在电泳过程中出现条带异常等现象。今天，我们就针对FuturePAGE™蛋白预制胶的常见问题，为大家一一解答，助您实验更顺利！
FuturePAGE™预制胶
基本参数信息
胶板尺寸：约10×8cm，厚4.5mm
凝胶尺寸：约8.5×7cm，厚1.0mm
上样孔数：10孔、 12孔、15孔
推荐上样量：
10孔胶每孔最大上样量为70μl，推荐上样量35μl以下
12孔胶每孔最大上样量为50μl，推荐上样量25μl以下
15孔胶每孔最大上样量为30μl，推荐上样量15μl以下
电泳体系：Bis-Tris 凝胶缓冲系统
电泳缓冲液：Mops Running Buffer（货号：BR0001-02，务必使用配套缓冲液）
凝胶浓度：固定浓度胶：8%、10%、12%；梯度胶：4-12%、4-20%
推荐电泳条件：电压不要超过180V，建议方案160V，45-50min
兼容主流mini电泳槽：Bio-Rad、天能、六一、WIX、君意东方等
保存条件：2-8℃保存 1年
FuturePAGE™预制胶
分离范围示意图
注意：
以上分离范围是MOPS的运行缓冲液的分离范围。
如果使用预制胶进行WB实验，推荐使用梯度胶：
①梯度胶转印时，大分子量蛋白停留在低浓度部分，较大程度上减少残留条带；
②梯度凝胶分离范围广，大、小分子量蛋白可以跑在同一块凝胶上；
③固定浓度胶可以对窄范围的条带做精细的分辨。
FuturePAGE™预制胶
使用方法说明
使用顺序：
①使用前先撕去底部金色胶条，再拔掉梳子，顺序不能颠倒；
②如果电泳槽密封胶条顶部凸起，需要将胶条取出、翻转，将其平坦的一面朝外并重新插回内框架的凹槽中；
③请使用配套的MOPS-SDS Running Buffer电泳液。蛋白电泳实验前，需检查是否漏液：内槽电泳液加满后，观察两分钟，看是否有缓冲液流出；
④蛋白电泳时，胶板和卡板需要卡到底，避免漏液；
⑤配好的电泳液，外槽可以重复使用，使用次数建议不超过3次；内槽建议尽量使用新鲜电泳液；
⑥不同样品的蛋白上样量存在差异，纯蛋白推荐上样量0.1-2ug，总蛋白推荐上样量10-15ug；
⑦建议不同上样孔之间上样量差异不要过大。
FuturePAGE™预制胶
常见问题解答
电泳仪报错/条带跑不下来
原因及解决方案：
底部胶条没有撕下来
marker、样品跑没了
原因及解决方案：
电极插反
条带出现弧度
原因及解决方案：
安装问题致使内槽漏液，可检查密封圈是否安装正确；同时安装2块预制胶，是否出现一高一低，是否出现歪斜。
条带迁移异常
原因及解决方案：
使用了错误的缓冲液，建议使用配套的Mops缓冲液。
梳齿明显萎缩、胶体出现气泡
原因及解决方案：
胶体冻伤，请置于2-8℃保存。保证冰箱或者冷库的温度，避免放置于出风口等温度不均匀区域。
WB背景深
原因及解决方案：
封闭和洗膜时，膜片充分浸透液体，尽量不要多张叠加。清洗海绵之后，用纯水泡过夜，充分洗净海绵。
条带双耳
原因及解决方案：
样品粘稠，提取时可加入核酸酶或者低温超声处理。
FuturePAGE™蛋白预制胶操作简便、结果稳定，但合理的保存、上样和电泳条件仍是实验成功的关键。希望这篇解答能帮助您优化实验流程，减少不必要的失误！
🔹 您在使用FuturePAGE™预制胶时还遇到过哪些问题？欢迎留言讨论！
