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从实验室到工业化:AAV载体生产的“层析革命”

从实验室到工业化:AAV载体生产的“层析革命” 伯仪集团
2025-05-16
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导读:引言全球范围内,至少已有54款基因治疗药物获批上市,包括病毒载体的体内基因疗法、体外基因疗法、小核酸药物等。

引言

全球范围内,至少已有54款基因治疗药物获批上市,包括病毒载体的体内基因疗法、体外基因疗法、小核酸药物等。基因疗法覆盖领域广泛,多集中在遗传性疾病、癌症、传染病、罕见病以及其他难治性疾病方面。

基因治疗是一种革命性的新型治疗方法,通过将新的正确基因导入靶细胞,从而改造、替换或修复有缺陷的基因,达到恢复机体细胞的功能的目的。

基因治疗中经常使用的病毒载体包括:

  • 腺相关病毒(adeno associated virus, AAV)

  • 慢病毒(lentivirus, LV)

  • 逆转录病毒(retrovirus, RV)

  • 腺病毒(adenovirus, Adv)等

其中腺相关病毒载体(AAV)以其安全性高、外源基因表达稳定、免疫原性低、宿主范围广、组织特异性高等特点,在基因治疗领域脱颖而出。 


腺相关病毒载体(Adeno-Associated Virus,AAV)


腺相关病毒载体是一类无法自主复制、不具有潜在致病性、无包膜的二十面体结构的病毒载体。其病毒颗粒直径约为20-30nm,含有4.7kb左右的线性单链DNA基因组。

AAV载体作为最有前途的病毒载体,在罕见病领域已经展现出良好的应用前景,包括SMA、年龄相关性黄斑变性(AMD)、血友病、AADC缺乏症等多种适应症,在临床上均有较大进展。

在过去十几年中,腺相关病毒(AAV)基因疗法的成功案例逐渐增多,大大增加了全球范围内CGT研发实验的热度,全球约69%的基因治疗试验处于临床I/II期,25%处于临床II期,而6%处于临床III期,预计到2025年,FDA每年将批准10~20个基因治疗产品,预估到2034年基因治疗市场的规模将达到$57.2 Billion。

截至2024年,全球已有多款基于AAV载体的基因治疗药物获批上市,主要应用于遗传性疾病的治疗。下表是主要AAV上市药物的信息汇总:

图1.全球获批AAV治疗药物汇总表


腺相关病毒(AAV)的组织亲嗜性(Tropism)由其衣壳蛋白(Capsid)结构决定,是基因治疗靶向性与疗效的核心。不同血清型(如AAV2、AAV8、AAV9等)通过与特定细胞表面受体结合,天然靶向心脏、肝、神经、视网膜等组织。目前已知13种AAV亚型及120余种变型,其Cap蛋白差异赋予各血清型独特应用优势,为遗传病、癌症等药物研发提供精准递送工具

图2.AAV血清型亲嗜性组织分布



▲▲▲


腺相关病毒(AAV)载体生产关键挑战及层析解决方案


   AAV载体生产关键挑战   


  • 工艺标准化缺失:行业缺乏可放大、稳定的AAV生产平台,阻碍规模化进程;

  • 上游放大难题:贴壁/悬浮培养体系难以兼顾高滴度与活性病毒生产;

  • 下游纯化痛点:空壳病毒分离困难,血清型差异导致工艺复杂化;

  • 质控标准空白:关键参数(如空壳率)缺乏统一检测方法,影响安全性评估。

图3.AAV载体生产工艺流程图


   典型的AAV纯化工艺   


①Capture:AAV Affinity Beads 从细胞裂解液中捕获 AAV 颗粒:

工艺目标:去除HCP、核酸酶等工艺相关杂质,快速捕获AAV样品

使用亲和层析介质(AAV Affinity Beads 4FF)进行 AAV颗粒捕获(见图4),从滴度为 1010-1011 vg/ml 的样品上清中,可以纯化获得高纯度的病毒,收率在 80% 以上,总量达到 1013vg。 

AAV Affinity Beads 4FF 亲和介质可满足用于基因治疗的腺相关病毒(AAV)的大规模纯化需求,对一系列 AAV 血清型均有结合作用,包括 AAV1 至 AAV9 以及合成血清型,一步纯化即可获得出色的纯度和产量。


图4. AAV Affinity Beads 4FF 纯化 AAV8 层析图谱


AAV Affinity Beads 4FF特性: 

  • 高通用性: 适用于 AAV1~AAV9 血清型

  • 高载量: 1012 ~ 1014 vg/ml

  • 高收率: ≥80%

  • 高耐受性: 可耐受一定浓度的酸液、碱液和有机试剂

  • 高安全性: 无动物源组分,临床应用安全,符合法规要求

  • 高稳定性: 自主研发生产,从源头把控质量,确保产品批次的稳定

  • 低成本: 标准的生产管理,节省成本,增强产品竞争力

  • 易放大: 可耐受较高的流速,适合大规模纯化。

②Polishing:Smac Q40 分离空实壳AAV 颗粒

工艺目标:去除Partial和Empty capsids、病毒聚体等(空衣壳和不完整衣壳影响治疗效果,也会导致副作用和免疫反应),进一步去除其他杂质(HCD、HCP、空壳片段等)

Partial capsids、Empty capsids 的存在不仅会影响治疗效果,还有可能导致免疫反应,因此,将它们去除变得至关重要。亲和层析步骤不能区分完整衣壳、空衣壳、不完整衣壳、病毒聚集体等,需要通过带电性差异进行精细分离,尽可能去除空衣壳等杂质;

精纯阶段对于填料的分辨率具有极高要求,利用完整衣壳与空衣壳之间等电点(PI)的微小差异,通过高分辨率阴离子Smac Q40层析来实现“空/实壳”分离(见图 5)。

通过亲和层析和离子层析后,能够有效去除空衣壳、不完整衣壳、聚体等杂质,得到完整的 AAV particles,完整衣壳率可达 90% 以上,满足 AAV 药物制备的需求。

图 5. Smac Q40 分离 AAV8 空实壳层析图谱


   AAV制剂的质量检测方法


为了更好地评估AAV药物的安全,稳定和有效性,需要对其纯度、滴度、效价、杂质残留等进行有效控制。

通用检测方法如下:

  • 滴度测定:使用qPCR或ddPCR测定基因组滴度。

  • 纯度检测:使用SDS-PAGE、HPLC或质谱分析检测HCP和HCD。

  • 活性检测:通过体外或体内实验评估AAV的转导效率。


AAV生产中除完整病毒颗粒(Full)外,还会产生空壳(Empty)、部分基因组衣壳(Partial)、错误包装颗粒及聚集体等杂质。这些杂质不仅降低产品纯度,还会引发免疫反应、抑制转导效率、削弱药物效价,严重威胁AAV疗法的安全性与有效性,因此必须严格监控生产中的工艺与产品相关杂质。


图 6. AAV载体生产过程中所产生的病毒颗粒类型

(源自:https://doi.org/10.1016/j.omtm.2021.02.010)


AAV的空壳率可以通过多种方法来进行检测,不同的检测方法各有优劣(见图7)。

图 7. AAV空实壳质控检测方法对比



产品订购信息


结语

面对腺相关病毒载体(AAV)下游纯化的诸多挑战,常州天地人和生物能够提供完整的解决方案,通过两步层析工艺(AAV Affinity Beads 4FF+Smac Q40), 可以实现AAV实心颗粒的比例达到90%以上, 且针对所有AAV血清型均有效,助力AAV药物从工艺开发到工业化生产的快速发展。


参考文献:

1.K. John Pasi NEJM 2020, J.R. Mendell NEJM 2017.

2.Bennett A, Patel S, Mietzsch M, et al. Thermal stability as a determinant of AAV serotype identity. Mol Ther - Methods Clin Dev. 2017; 6:171–182.

3.Nam, Yu Ri, et al. "Distinguishing between DNA-Loaded Full and Empty Capsids of Adeno-Associated Virus with Atomic Force Microscopy Imaging." Langmuir (2023).

4.Heldt, Caryn L., et al. "Empty and Full AAV Capsid Charge and Hydrophobicity Differences Measured with Single-Particle AFM." Langmuir (2023).


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