
腺相关病毒载体(Adeno-Associated Virus,AAV)
腺相关病毒载体是一类无法自主复制、不具有潜在致病性、无包膜的二十面体结构的病毒载体。其病毒颗粒直径约为20-30nm,含有4.7kb左右的线性单链DNA基因组。
AAV载体作为最有前途的病毒载体,在罕见病领域已经展现出良好的应用前景,包括SMA、年龄相关性黄斑变性(AMD)、血友病、AADC缺乏症等多种适应症,在临床上均有较大进展。
在过去十几年中,腺相关病毒(AAV)基因疗法的成功案例逐渐增多,大大增加了全球范围内CGT研发实验的热度,全球约69%的基因治疗试验处于临床I/II期,25%处于临床II期,而6%处于临床III期,预计到2025年,FDA每年将批准10~20个基因治疗产品,预估到2034年基因治疗市场的规模将达到$57.2 Billion。
截至2024年,全球已有多款基于AAV载体的基因治疗药物获批上市,主要应用于遗传性疾病的治疗。下表是主要AAV上市药物的信息汇总:
图1.全球获批AAV治疗药物汇总表
腺相关病毒(AAV)的组织亲嗜性(Tropism)由其衣壳蛋白(Capsid)结构决定,是基因治疗靶向性与疗效的核心。不同血清型(如AAV2、AAV8、AAV9等)通过与特定细胞表面受体结合,天然靶向心脏、肝、神经、视网膜等组织。目前已知13种AAV亚型及120余种变型,其Cap蛋白差异赋予各血清型独特应用优势,为遗传病、癌症等药物研发提供精准递送工具。
图2.AAV血清型亲嗜性组织分布
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腺相关病毒(AAV)载体生产关键挑战及层析解决方案
AAV载体生产关键挑战
工艺标准化缺失:行业缺乏可放大、稳定的AAV生产平台,阻碍规模化进程;
上游放大难题:贴壁/悬浮培养体系难以兼顾高滴度与活性病毒生产;
下游纯化痛点:空壳病毒分离困难,血清型差异导致工艺复杂化;
质控标准空白:关键参数(如空壳率)缺乏统一检测方法,影响安全性评估。
图3.AAV载体生产工艺流程图
典型的AAV纯化工艺
①Capture:AAV Affinity Beads 从细胞裂解液中捕获 AAV 颗粒:
工艺目标:去除HCP、核酸酶等工艺相关杂质,快速捕获AAV样品
使用亲和层析介质(AAV Affinity Beads 4FF)进行 AAV颗粒捕获(见图4),从滴度为 1010-1011 vg/ml 的样品上清中,可以纯化获得高纯度的病毒,收率在 80% 以上,总量达到 1013vg。
AAV Affinity Beads 4FF 亲和介质可满足用于基因治疗的腺相关病毒(AAV)的大规模纯化需求,对一系列 AAV 血清型均有结合作用,包括 AAV1 至 AAV9 以及合成血清型,一步纯化即可获得出色的纯度和产量。
图4. AAV Affinity Beads 4FF 纯化 AAV8 层析图谱
AAV Affinity Beads 4FF特性:
高通用性: 适用于 AAV1~AAV9 血清型
高载量: 1012 ~ 1014 vg/ml
高收率: ≥80%
高耐受性: 可耐受一定浓度的酸液、碱液和有机试剂
高安全性: 无动物源组分,临床应用安全,符合法规要求
高稳定性: 自主研发生产,从源头把控质量,确保产品批次的稳定
低成本: 标准的生产管理,节省成本,增强产品竞争力
易放大: 可耐受较高的流速,适合大规模纯化。
②Polishing:Smac Q40 分离空实壳AAV 颗粒
工艺目标:去除Partial和Empty capsids、病毒聚体等(空衣壳和不完整衣壳影响治疗效果,也会导致副作用和免疫反应),进一步去除其他杂质(HCD、HCP、空壳片段等)
Partial capsids、Empty capsids 的存在不仅会影响治疗效果,还有可能导致免疫反应,因此,将它们去除变得至关重要。亲和层析步骤不能区分完整衣壳、空衣壳、不完整衣壳、病毒聚集体等,需要通过带电性差异进行精细分离,尽可能去除空衣壳等杂质;
精纯阶段对于填料的分辨率具有极高要求,利用完整衣壳与空衣壳之间等电点(PI)的微小差异,通过高分辨率阴离子Smac Q40层析来实现“空/实壳”分离(见图 5)。
通过亲和层析和离子层析后,能够有效去除空衣壳、不完整衣壳、聚体等杂质,得到完整的 AAV particles,完整衣壳率可达 90% 以上,满足 AAV 药物制备的需求。
图 5. Smac Q40 分离 AAV8 空实壳层析图谱
AAV制剂的质量检测方法
为了更好地评估AAV药物的安全,稳定和有效性,需要对其纯度、滴度、效价、杂质残留等进行有效控制。
通用检测方法如下:
滴度测定:使用qPCR或ddPCR测定基因组滴度。
纯度检测:使用SDS-PAGE、HPLC或质谱分析检测HCP和HCD。
活性检测:通过体外或体内实验评估AAV的转导效率。
AAV生产中除完整病毒颗粒(Full)外,还会产生空壳(Empty)、部分基因组衣壳(Partial)、错误包装颗粒及聚集体等杂质。这些杂质不仅降低产品纯度,还会引发免疫反应、抑制转导效率、削弱药物效价,严重威胁AAV疗法的安全性与有效性,因此必须严格监控生产中的工艺与产品相关杂质。
图 6. AAV载体生产过程中所产生的病毒颗粒类型
(源自:https://doi.org/10.1016/j.omtm.2021.02.010)
AAV的空壳率可以通过多种方法来进行检测,不同的检测方法各有优劣(见图7)。
图 7. AAV空实壳质控检测方法对比
产品订购信息
参考文献:
1.K. John Pasi NEJM 2020, J.R. Mendell NEJM 2017.
2.Bennett A, Patel S, Mietzsch M, et al. Thermal stability as a determinant of AAV serotype identity. Mol Ther - Methods Clin Dev. 2017; 6:171–182.
3.Nam, Yu Ri, et al. "Distinguishing between DNA-Loaded Full and Empty Capsids of Adeno-Associated Virus with Atomic Force Microscopy Imaging." Langmuir (2023).
4.Heldt, Caryn L., et al. "Empty and Full AAV Capsid Charge and Hydrophobicity Differences Measured with Single-Particle AFM." Langmuir (2023).
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