干细胞来源胰岛细胞治疗糖尿病的研究已经屡见不鲜,其具体作用原理与相关通路信息已经被广泛研究并应用,本篇文章将简要介绍三种多能干细胞来源分化胰岛细胞的具体作用方式及方法。
胚胎干细胞分化胰岛细胞
1. 细胞培养
(1) 使用细胞消化液将胚胎干细胞(hESC)细胞分离成单细胞悬液,在5.5 ml hESC培养基中添加10 ng/ml activin A和10 ng/ml heregulinB,以每孔5.5×106个细胞的密度在6孔悬浮板中进行计数和接种。
(2) 在摇床培养箱中以100 rpm的转速在37°C和5% CO2下孵育,诱导三维球体形成。
(3) 24小时后,将球收集在50 ml离心管中,离心,PBS洗涤一次,重悬在第1天的培养基中。
(4) 将第1天培养基中的重悬球分散到新鲜的6孔悬浮板中,每孔5.5 ml培养基。此后,每天更换培养基至第3天。
2. 细胞分化
从第4天到第20天,去除4.5 ml培养基并添加5ml新鲜培养基。培养基组成如下:
(1) 第1天
RPMI含0.2% FBS、1:50000 ITS、100 ng/ml activin A、50 ng/ml WNT3a
(2) 第2天
RPMI含0.2% FBS、1:2000 ITS、100 ng/ml activin A
(3) 第3天
RPMI含0.2% FBS、1:1000 ITS、2.5 μM TGFBI IV、25 ng/ml KGF
(4) 第4-5天
含0.4% FBS、1:10000 ITS、25 ng/ml KGF的RPMI
(5) 第6-7天
DMEM加25 mM葡萄糖、1:100 B27 、3 nM TTNPB
(6) 第8天
DMEM加25 mM葡萄糖、1:100 B27、3 nM TTNPB、50 ng/ml EGF
(7) 第9-11天
DMEM加25 mM葡萄糖、1:100 B27、50 ng/ml EGF、50 ng/ml KGF
(8) 第12-20天
DMEM培养基中加入表1所示试剂
表1. 第12-20天胚胎干细胞分化胰岛细胞培养基添加剂
(9) 第20天
收集微球,细胞解离也短时孵育,分离成单细胞进行流式细胞术检测。活的高GFP细胞在Aria II上以低流速分选,并在微孔板中以每团1000个细胞的密度在含有表2所示试剂的CMRL培养基中重新聚集。
表2. 胚胎干细胞分化胰岛细胞第20天培养基添加剂
(10) 第22-23天
将重新聚集的增强细胞簇从微孔板转移到震荡培养箱中,以100 rpm的速度放置,并进一步培养长达两周。重新聚合后每隔三天换液[1,2]。
分化第20天明场和荧光染色图[2]
间充质干细胞分化胰岛细胞
1. 将间充质干细胞用不含Mg2+和Ca2+的DPBS冲洗,然后用细胞消化液在室温下消化。
2. 分离的单细胞用低糖无血清人MSC培养基冲洗,300 g离心5 min。
3. 将得到的细胞颗粒在相同的培养基中重悬,以1×105个细胞每平方厘米的密度接种于基质胶包被的培养皿中。
4. 培养基微无血清DMEM-LG,添加100 ng/ml activin-A、3 μM CHIR99021、100 nM wortmannin和1%减胰岛素B-27。培养48小时。
5. 将细胞在含有100 ng/ml activin-A、3μM CHIR99021和1%减胰岛素B-27的DMEM-LG中培养2天,然后在添加55 nM trichostatin-A的无血清DMEM-LG中培养过夜。
6. 接下来的12天,细胞在高糖人间充质干细胞培养基中培养,培养基中添加10 mM烟酰胺、10 nM胰高血糖素样肽-1、10µg/L PRDX6蛋白和0.1 nM Exendin-4。
7. 培养基每三天更换一次
8. 最后用细胞消化液处理细胞
9. 将得到的单细胞悬液用相同的培养基在超低贴壁培养皿中接种3天[3]。
间充质干细胞来源胰岛细胞荧光图[3]
iPSC分化胰岛细胞
1.细胞培养
使用细胞解离液将贴壁的hCiPSCs(化学诱导重编程人多能干细胞)分散成单个细胞,用DMEM/F12冲洗,在基质胶包被的细胞工厂上以每平方厘米约1.35×105个细胞的密度接种于添加10 μM Y27632的干细胞培养基中。在接种24 h后开始分化。各阶段的培养基配方如下:
2.第1阶段(4天)
(1)第1天:人微血管内皮细胞(HMVEC)减血清补充培养基添加表3所示成分。
表3. iPSC分化胰岛细胞第1阶段第1天培养基添加剂
(2)第2-4天,在人微血管内皮细胞(HMVEC)减血清补充培养基加入。
表4. iPSC分化胰岛细胞第1阶段第2-4天培养基添加剂
3.第二阶段(2天)
人微血管内皮细胞(HMVEC)减血清补充培养基中添加表5所示成分。
表5. iPSC分化胰岛细胞第2阶段培养基添加剂
4.第三阶段(4天)
DMEM培养基中添加表6中所示试剂。
表6. iPSC分化胰岛细胞第3阶段培养基添加剂
5.准备工作
细胞用DMEM培养基冲洗,以300 g的速度离心3分钟。然后将细胞以5×106个细胞每孔的密度接种于添加了10 μM Y27632的第四阶段培养基的6孔微孔板中,以300 g的速度离心5分钟,将细胞旋转到微孔底部。然后将细胞在37℃的5% CO2的在第三阶段结束时,将细胞分散,用细胞解离液在37℃下孵育6至8分钟。将释放出来的培养箱中孵育20小时。将生成的细胞团转移到含有第四阶段培养基的超低附着六孔板中。悬浮聚集体在培养摇床中培养,在37℃,5% CO2和85%湿度下,转速为90转/分。
6.第4阶段(5至6天)
DMEM培养基中添加表7所示试剂。
表7. iPSC分化胰岛细胞第4阶段培养基添加剂
7.第5阶段(6天)
从第5阶段第1天开始,在DMEM培养基中添加表8所示试剂。
表8. iPSC分化胰岛细胞第5阶段培养基添加剂
ISX9处理第3-6天,并对不同细胞系的处理时间窗进行调整,以获得最佳的β细胞分化效率。
8.第6阶段(2-4天)
DMEM培养基中添加表9所示试剂[4]。
表9. iPSC分化胰岛细胞第6阶段培养基添加剂

iPSC分化胰岛细胞整体流程[4]
以上分化方法均来源于相应研究文献,在众多干细胞分化胰岛细胞的研究中仍存在很多未知的机理和问题,比如分化调控机制和不同类型的分化方法等,有待研究者们进一步挖掘。
参考文献
[1] Nair GG, Liu JS, et al. Recapitulating endocrine cell clustering in culture promotes maturation of human stem-cell-derived β cells. Nat Cell Biol. 2019 Feb;21(2):263-274. doi: 10.1038/s41556-018-0271-4.
[2] Gopika Nair, Matthias Hebrok, Holger Russ et al. Rapid generation of functional mature pancreatic islet-beta cells from human pluripotent stem cells, 03 February 2019, PROTOCOL available at Protocol Exchange [https://doi.org/10.1038/protex.2018.140]
[3] Ghoneim MA, Gabr MM, et al. Transplantation of insulin-producing cells derived from human mesenchymal stromal/stem cells into diabetic humanized mice. Stem Cell Res Ther. 2022 Jul 26;13(1):350. doi: 10.1186/s13287-022-03048-y.
[4] Du Y, Liang Z, et al. Human pluripotent stem-cell-derived islets ameliorate diabetes in non-human primates. Nat Med. 2022 Feb;28(2):272-282. doi: 10.1038/s41591-021-01645-7.
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