产品包装：SafeRed® 10000x Nucleic Acid Dye 500uL/⽀；
储存条件：室温或4℃避光可保存24个⽉。
⼀．胶染法（预染法，⽤法EB完全相同）
制胶时加⼊SafeRed 核酸染料(染料灵敏，每100mL 琼脂糖溶液中加⼊10μL SafeRed 原装液即可)。按常规⽅法电泳。
1. 实验室材料和试剂：
（1） 实验样品：质粒 DNA，DNA marker（国产的 DNA marker 浓度太⾼，⾄少稀释 2～3 倍后使⽤）
（2） TBE 缓冲液配置：10X TBE 电泳缓冲液[Tris 107.8146g (890mM),硼酸 55.0287g(890mM)，EDTA 5.845g(20mM),加 NaOH 约 4g 调节 pH=8.3；定容 1000mL]；⽤ ddH2O 稀释 10 倍配制 1X TBE 电泳缓冲液。
（3） TAE 缓冲液配置：50X TAE 电泳缓冲液[Tris 242g (2M),EDTA 37.2g(100mM),加醋酸约 57ml 调节 pH=8.5；定容 1000mL]；⽤ ddH2O稀释 50 倍配制 1X TAE 电泳缓冲液。
（4） 溴酚蓝指示剂，1%的⻄班⽛琼脂糖凝胶
（5） 仪器：电泳仪（130v），移液器(0.5~10ul)，凝胶成像仪
2. 实验步骤：
（1） 制胶：将 0.5g 琼脂糖溶于 50mL 1X TBE 电泳缓冲液中，加热⾄琼脂糖完全融化。将融好的琼脂糖溶液室温放置 50℃左右加⼊ 5uL 的 SafeRed 凝胶电泳染料，摇匀。
（2） 倒胶：将制好的琼脂糖凝胶缓慢倒于制胶托盘内，避免产⽣⽓泡。将点样梳⼦垂直置于电泳胶膜的⼀端，距离托盘底部约 1mm。放置时尽量保持平稳，切勿晃动。
（3） 置胶：待约 30 分钟左右胶体充分凝固后，缓慢垂直向上拔起点样梳⼦，切勿⽤⼒过猛。（夏季适当延⻓凝胶时间）
（4） 将琼脂糖凝胶放⼊电泳槽内，加⼊电泳缓冲液，使电泳缓冲液液⾯⾼于凝胶⾯约 1~2mm。
（5） 将混合溴酚蓝指示剂的 DNA 样本（1ul 溴酚蓝与 2ul DNA 标本混合）加⼊到点样孔内。
（6） 盖上电泳槽盖，开启电源，使 DNA 从负极移向正极恒压电泳(电压恒定在 120~130v 之间，⼀般可选择 130V)。
（7） 当 DNA 条带距离点样孔约 1~2cm 后关闭电源，(约 30～40 分钟)取出凝胶。
（8） ⽤ 302nm 激发的 UV 凝胶成像系统观察结果。
*注：此方法染色染料用量相对较少。染料加入胶中可直接使用微波炉加热，制好的胶溶液可以在室温下保存直至用完。
⼆．泡染法(后染法)
注意：泡染出现的条带弯曲和拖带的现象与样品的质量和凝胶的浓度有关，并不是染料的问题！泡染比预染适当提高琼脂糖凝胶浓度约0.2%-0.3%。
（1） 按照以上常规⽅法进⾏电泳。用于胶回收等高浓度DNA样品强烈推荐泡染法！
（2） 将SafeRed® 10,000×储液稀释约10000倍到0.1M NaCl溶液中制成1×染⾊液。（例如将5μL SafeRed® 10,000×原装液加⼊到50mL 0.1M NaCl溶液中）。
（3） 将凝胶⼩⼼地放⼊合适的容器中（如聚丙烯容器中）缓慢加⼊⾜量的3× 染⾊液浸没凝胶。室温振荡染⾊30min左右，最佳染⾊时间根据凝胶厚度以及琼脂糖浓度不同⽽略有不同。对于含1％的凝胶，染⾊时间约30min。
（4） ⽤ 302nm 激发的紫外凝胶成像系统观察结果。
*注意事项：用泡染法染色时，染料用量较多。3× SafeRed®染色液室温避光保存，可重复使用3次左右。
三．核酸电泳的PAGE步骤：
1） 将TBE制备的凝胶放⼊电泳槽中，⽤夹⼦夹住边缘。
2） ⽤配置凝胶溶液同⼀批次的5×TBE灌满缓冲液槽。⽤注射器排除凝胶底部的⽓泡。
3） ⽤注射器吸取1×TBE冲洗加样孔。将DNA样品和适量的6×凝胶上样缓冲液混合，⽤微量移液管加⼊加样孔。
4） 将电极与电源相连（正极接下槽），打开电源⼀般90V；1～8V/cm。进⾏电泳9h。
5） 电泳⾄标准参照染料迁移⾄所需位置（⼀般是电泳到⼆甲苯完全迁出，溴酚蓝距底边2～3cm停⽌）。关闭电源，拔掉插头，弃去电泳槽中的电泳液。
6） 将凝胶取下来放⼊，染⾊⽫中，加3X SafeRed的1X缓冲液中的振荡染⾊30-60分，放置在紫外检测即可。
*注意事项：PAGE不能用预染或点染的方法；只能用泡染的方法显色，由于聚丙烯酰胺比较致密，染料不容易深入，显色效果没有琼酯糖凝胶好。
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