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2区5.2分!转录组学挖掘:揭秘Cited2缺失重编程干细胞转录网络、破坏基因组稳态并导致早期发育谱系缺陷?为先天性心脏病提供新的分子机制

2区5.2分!转录组学挖掘:揭秘Cited2缺失重编程干细胞转录网络、破坏基因组稳态并导致早期发育谱系缺陷?为先天性心脏病提供新的分子机制 CNS生信新靶点挖掘
2026-04-08
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导读:你是否想过,一个基因的缺失就能让全能干细胞“精神分裂”,既无法维持自我更新,又胡乱开启分化程序?最新发表在 Cells 期刊的纯生信研究,通过公共数据库挖掘与转录组学分析,首次描绘了急性耗竭Cited
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打破干细胞稳态!转录组学揭示Cited2是维持“全能性”与“分化潜能”的隐形指挥官!你是否想过,一个基因的缺失就能让全能干细胞“精神分裂”,既无法维持自我更新,又胡乱开启分化程序?最新发表在 Cells 期刊的研究,通过公共数据库挖掘与转录组学分析,首次描绘了急性耗竭Cited2后小鼠胚胎干细胞(ESC)的完整转录组图谱。研究发现,Cited2缺失会迅速瓦解Oct4/Sox2/Nanog为核心的多能性网络,同时异常激活Suz12调控的分化基因。更惊人的是,该研究揭示了Cited2是连接Nodal/Activin信号、DNA损伤修复(p53通路)与缺氧应激(HIF1α)的关键分子枢纽。想了解Cited2如何调控从心脏(Pitx2)、神经(Zic2)到代谢(氨基酸转运体)的广泛基因网络吗?这篇不容错过!

今天给大家解读一篇3月发表在《Cells》上的题目为“Acute Depletion of Cited2 in Embryonic Stem Cells Disrupts Gene Networks Controlling Self-Renewal, Homeostasis, and Early Cell Fate Commitment.”的文章。本研究利用可诱导敲除的小鼠胚胎干细胞模型,通过急性耗竭Cited2,结合转录组学、分子生物学和细胞生物学方法,全面阐述了Cited2在维持ESC多能性、稳态和发育能力中的核心作用。研究发现Cited2缺失导致多能性网络解体、Nodal/Activin信号输出受损、DNA损伤反应基因下调以及p53/HIF等应激通路上调,最终引发自发分化和细胞存活率下降。文章将细胞表型与分子机制及已知的胚胎发育缺陷相联系,深化了对Cited2在早期发育中功能的理解。请持续关注我们,每天为您解读最新见刊的文献!)想薅生信资料羊毛?直接在对话框回复 “资料”,免费领取干货大礼包!包括数据集、绘图代码、图表复现、思路总结、参考文献……0代码!鼠标点点点即可轻松完成5-10分生信SCI全文复现!

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团队成员合影(位于上海陆家嘴中心,可随时预约参观)

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题目:《胚胎干细胞中Cited2的急性耗竭扰乱了控制自我更新、稳态和早期细胞命运决定的基因网络Acute Depletion of Cited2 in Embryonic Stem Cells Disrupts Gene Networks Controlling Self-Renewal, Homeostasis, and Early Cell Fate Commitment

发表期刊:Cells

影响因子:5.2

研究背景

  1. Cited2的重要性
    Cited2是一种关键的转录调控因子,对于脊椎动物的胚胎发育和细胞稳态至关重要。在人类中,CITED2变异与先天性心脏病相关。
  2. 分子功能
    Cited2能与转录共激活因子p300/CBP高亲和力结合,通过竞争性结合或干扰其乙酰化活性,调控多种转录因子(如HIF1α、NF-κB、p53、Smad2/3等)的活性,从而整合多种信号通路。
  3. 在ESC中的已知作用
    在小鼠ESC中,Cited2和p300/CBP在平衡多能性维持和细胞命运决定中发挥复杂作用。Cited2过表达足以在无LIF条件下维持自我更新,而其急性缺失则导致增殖/存活受损并伴随自发分化。



                            CNSknowall 平台 Pubmed+AI 快速提炼全文要点

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                            研究思路:

                                  1. 模型构建
                                    使用携带CreERT2的Cited2条件性敲除小鼠ESC系(C2fl/fl[Cre]),通过4-羟基他莫昔芬(4HT)处理实现Cited2的急性、特异性耗竭。
                                  2. 表型与机制解析
                                    • 转录组全景分析
                                      对Cited2耗竭后48小时(未分化条件下)的ESC进行微阵列分析,鉴定差异表达基因(DEG)。
                                    • 关键通路验证
                                      通过报告基因实验、qRT-PCR验证对Nodal/Activin信号通路、多能性/分化标志物、p53靶基因等的影响。
                                    • 功能关联分析
                                      进行基因富集分析(GO、ChEA),并与已发表的p300、CBP缺失数据交叉比较,明确Cited2特异性调控网络。
                                    • 细胞表型与机制探索
                                      通过检测γH2AX评估DNA损伤,使用pifithrin-α抑制p53评估其在细胞死亡中的作用,通过ChIP检测组蛋白修饰(H3K27me3/H3K27ac)的变化。
                                  3. 体内相关性验证
                                    在胚胎大脑特定区域敲除Cited2的模型中,验证部分在ESC中受影响的神经发育相关基因的表达变化。

                                  研究亮点:

                                          1. 系统性
                                            采用急性耗竭模型结合转录组学(微阵列)分析,系统描绘了Cited2缺失后ESC的早期转录全景变化。
                                          2. 机制深入
                                            不仅描述了表型(自发分化、细胞死亡),还深入探讨了对Nodal/Activin信号通路输出、DNA损伤反应、p53/HIF应激通路以及组蛋白修饰(H3K27me3/H3K27ac)的潜在影响。
                                          3. 对比清晰
                                            通过与p300、CBP缺失数据的对比,明确了Cited2功能的独特性,指出其并非p300/CBP的全局转录放大器,而是在特定发育基因节点上起选择性缓冲作用。
                                          4. 桥梁意义
                                            将ESC中发现的基因调控网络(如心脏、神经发育相关基因下调)与Cited2缺失小鼠胚胎的发育缺陷表型直接关联,为理解其发育生物学功能提供了细胞机制解释。


                                              研究结果:

                                                        1. 转录组剧烈变化
                                                          Cited2急性耗竭48小时后,共鉴定出399个差异表达基因(168个上调,231个下调)。
                                                        2. 多能性网络解体
                                                          下调基因显著富集于OCT4、SOX2、NANOG等多能性核心因子的靶基因。关键多能性因子Nanog、Tbx3、Klf4表达下降。
                                                        3. 关键发育信号通路受损
                                                          • Nodal/Activin通路
                                                            关键靶基因 Lefty1Lefty2Pitx2 显著下调。报告基因实验证实Smad2/3-Foxh1依赖的转录活性降低。Cited2可作为该通路的共激活因子。
                                                          • Wnt通路
                                                            推测经典Wnt信号可能被过度激活(基于抑制因子Dkk1等下调及LEF1靶基因上调)。
                                                        4. 分化程序紊乱
                                                          在未分化条件下,早期中胚层(Mesp1, Kdr, Isl1)和谱系标志物(Dkk1, Cdx2)异常上调,表明出现自发、无序的分化,而非正常的定向分化。
                                                        5. 应激与基因组稳定性破坏
                                                          • DNA损伤反应
                                                            多个DNA修复和同源重组相关基因(如 Rad51c, Mdc1)表达下调。
                                                          • 应激通路激活
                                                            p53靶基因(如 Plk2, Hmox1)和HIF1α靶基因表达上调。细胞内ROS水平增加,γH2AX焦点强度增强。
                                                          • 部分依赖p53
                                                            低剂量p53抑制剂pifithrin-α能部分挽救Cited2耗竭导致的细胞数量减少。
                                                        6. 代谢与免疫相关基因下调
                                                          多种氨基酸转运蛋白基因和干扰素反应相关基因(如 Ifitm1, Ifitm3)表达降低。
                                                        7. 与p300/CBP功能的对比与关联
                                                          • 有限重叠
                                                            Cited2缺失的转录谱与p300或CBP缺失谱重叠度很低,表明Cited2并非其全局辅助因子。
                                                          • 共享节点
                                                            重叠部分主要集中于少数发育相关基因(如 Lefty1/2)和应激/免疫相关基因。
                                                          • 无协同效应
                                                            共转染实验显示,Cited2与p300或CBP在激活Nanog启动子上无叠加或协同作用。
                                                          • 组蛋白乙酰化
                                                            Cited2耗竭后全细胞裂解液的组蛋白乙酰转移酶活性略有增加,但p300免疫沉淀物的活性未变。对特定基因启动子(如Wnt5a)的H3K27ac水平影响有限。
                                                        8. 体内验证
                                                          在胚胎大脑特异性敲除Cited2的模型中,部分在ESC中下调的神经相关基因(Bmi1, Enpp2, Nav2, Zic5)表达未变,提示其在ESC中的下调可能是多能性退出后的间接后果。


                                                        研究总结:

                                                        1. 核心结论
                                                          Cited2是维持ESC身份的核心调节因子,其功能是整合多能性维持、信号通路输出和应激反应控制。它通过一个“选择性转录缓冲程序”来保障发育能力。
                                                        2. 作用机制
                                                          • Cited2通过维持核心多能性网络和Nodal/Activin等关键发育信号通路的有效转录输出,来支持自我更新和正确的谱系启动。
                                                          • 通过维持DNA修复基因表达和抑制ROS、p53、HIF等应激通路,来保护基因组完整性并防止过早的细胞死亡或分化。
                                                          • 其缺失导致的多能性崩溃、应激激活和分化程序紊乱共同造成了发育潜能丧失。
                                                        3. 功能独特性
                                                          Cited2的功能不能简单地等同于p300/CBP的辅助因子。它在ESC中调控一个独特的基因网络,与p300/CBP仅在特定发育和应激节点上存在交集。
                                                        4. 发育意义
                                                          ESC中受Cited2调控的许多基因(涉及心脏、神经、胎盘发育)与Cited2缺失胚胎的缺陷表型直接对应,从而在细胞水平上解释了其胚胎致死性和多组织发育异常的分子基础。研究提示Cited2可能在协调早期胚胎的营养摄取、应激抵抗和免疫防御方面具有更广泛作用。



                                                        结果译文:

                                                        1.在未分化ESC中,Cited2耗竭破坏多能性相关转录和应激保护程序


                                                        我们之前已证明,在支持多能性和自我更新的培养条件下,小鼠ESC中Cited2的急性耗竭会诱导自发分化和细胞死亡[35]。为了阐明ESC中Cited2耗竭引起的细胞异常背后的分子机制,我们进行了基于微阵列的转录谱分析,以比较在支持自我更新的条件下培养的小鼠 C2fl/fl[Cre] ESC,经4-羟基他莫昔芬(4HT)处理48小时以耗竭Cited2,或经乙醇(溶剂)处理作为表达正常水平Cited2的对照细胞后的基因表达谱,如前所述[15,35]。为简化文本,这些条件将被称为第0天(D0)乙醇或4HT。还将基因表达模式与先前报道的分化第4天(D4)的Cited2耗竭细胞中的差异表达基因(DEG)进行了比较[15],这些细胞是在与D0样本相同的条件下同时产生的。主成分分析(PCA)显示,在分化D4时,经4HT处理的细胞(Cited2耗竭细胞)的基因表达谱与未分化的对照ESC聚类更接近,而不是与分化D4的对照细胞聚类(图1A)。有趣的是,在支持自我更新的D0培养条件下,Cited2耗竭细胞(先前显示会自发分化[35])的基因表达谱与分化D4的对照细胞不同(图1A)。因此,Cited2是ESC分化过程中正确转录轨迹所必需的,它的缺失导致了既不完全多能也不适当分化的异常基因表达状态。我们通过重点关注表现出显著差异表达(校正后 p 值 < 0.05)且 log2 倍数变化 > 1 或 < -1 的转录本来分析基因表达谱。通过比较对照ESC与在自我更新培养条件下培养的4HT处理细胞来分析DEG(表1和表S1)。在Cited2耗竭的细胞中,相对于对照ESC,有168个基因上调,231个基因下调(图1B)。

                                                        对Cited2耗竭细胞(D0)中下调基因的基因集富集分析使用Enrichr进行[43,44]。在Enrichr中,针对来自ChEA 2022的转录因子靶基因集测试了下调基因(补充表S1)。许多下调基因显著富集于核心多能性转录因子Oct4、Sox2和Nanog,以及辅助因子Klf2、Klf4、Klf5、Smad3和Tcf3的靶标(补充表S2A)。这些观察结果表明,Cited2耗竭优先影响与多能性调控网络相关的基因,这与我们之前的研究一致,该研究表明Cited2对于维持小鼠ESC的自我更新是必需的,并通过募集到Nanog、Tbx3和Klf4的调控区域来促进Nanog表达[35]。


                                                        此外,排名靠前的下调基因包括Lefty1和Lefty2(图1B和补充表S1),它们在维持ESC多能性与分化平衡、左右模式形成以及胚胎心脏和神经发育中起着至关重要的作用[50-52]。此外,T/Brachyury(编码泛中胚层标记物,我们之前已证明在ESC分化过程中,其在Cited2耗竭细胞中表达下调[15,53])和Pitx2(小鼠胚胎中Cited2的直接靶基因,编码一种转录因子[2]),也是Cited2耗竭ESC中下调最多的基因之一(表1和S1)。Lefty1、Lefty2和Pitx2是Nodal/Activin信号通路公认的直接靶标,通过转录因子Smad2、Smad3以及与Foxh1合作被激活[54]。


                                                        此外,已知Cited2作为Smad2/Smad3的转录共激活因子[55],暗示其在调节小鼠ESC中该通路转录输出中的潜在作用。基于这些观察,我们假设Cited2耗竭损害了ESC对Nodal/Activin信号的转录响应能力,而不是影响通路本身的上游激活。


                                                        为了评估Citeded2是否通过共激活Smad2/Smad3和Foxh1参与Nodal/Activin通路活性,我们在Cited2耗竭和对照ESC中进行了瞬时转染实验,使用(ARE)3-lux荧光素酶报告基因[56]。该报告基因包含在来自爪蟾属的activin即刻早期基因启动子的三个串联activin响应元件控制下的荧光素酶基因。(ARE)3-lux专门设计用于测量TGF-β/Activin/Nodal通路下游的Smad2/Smad3-Foxh1依赖性转录活性。值得注意的是,在Cited2耗竭的细胞中,(ARE)3-lux活性显著降低(图1C),表明在缺乏Cited2的情况下,Smad/Foxh1依赖的转录输出受损。


                                                        为了进一步研究TGF-β/Activin/Nodal通路组分对这一转录反应的贡献,我们在E14TG2A小鼠ESC中进行了共转染实验。将(ARE)3-lux与编码flag-Smad2或flag-Foxh1的表达质粒共转染导致报告基因激活,其中Foxh1发挥了特别强的效应(图1D),这与其作为ESC中Smad2/Smad3依赖性转录的关键介质的角色一致。重要的是,flag-CITED2与flag-Smad2或flag-Foxh1的共表达进一步增强报告基因活性,支持CITED2在此背景下作为转录共激活因子的作用。添加外源性Activin A在所有共转染条件下都强烈增加了(ARE)3-lux活性,这与强通路激活一致。在这些条件下,外源性Smad2和CITED2的个体贡献不再明显,这可能反映了在多能干细胞中最大Activin/Nodal信号传导下,靶基因位点的Smad2/Smad3依赖性转录复合物达到饱和[57]。总之,这些发现表明,在Nodal/Activin通路下游,Cited2是有效转录激活Smad2/Smad3靶基因所必需的,而不是启动信号级联反应本身所必需的。因此,小鼠ESC中Cited2表达的减少限制了Smad2/Smad3在其靶位点的有效转录输出,导致典型靶标如Lefty1、Lefty2和Pitx2的表达下降。


                                                        基于我们之前发现Cited2在ESC分化过程中对中胚层和心肌细胞特化至关重要,我们通过qRT-PCR分析了在D0和D4时关键谱系标记物(Mesp1, Kdr, Isl1, Dkk1和Cdx2)的表达(图2A)。这些基因在D0的Cited2耗竭细胞中显著上调,表明过早或失调地激活了中胚层和早期谱系标记物,与我们之前的观察一致[35]。因此,与在胚状体(EB)介导的分化中观察到的有序进展(谱系标记物在严格控制的序列中被激活)不同,Cited2耗竭可能导致自发和不协调的分化。具体来说,Cited2的急性缺失可能导致在未分化条件下中胚层标记物(Mesp1, Kdr, Isl1)和早期谱系调节因子(Dkk1, Cdx2)的异常上调,突显出与EB过程分化不同的分化轨迹[15,35,39]。这种谱系标记物的过早表达加剧了多能性“守门”功能的崩溃,因为Cited2的缺失导致核心转录因子(包括Nanog, Klf4和Tbx3)的下调,这些因子对于维持多能状态至关重要[35]。此外,如微阵列分析所示,在D0的Cited2耗竭细胞中,许多下调基因也是其他多能性相关调节因子(如Oct4, Sox2, Nanog, Klf2, Klf4, Klf5, Smad3和Tcf3)的靶标,进一步强调了Cited2对维持多能性网络的广泛影响。此外,参与IFN反应的基因(Bst12, Ifitm1, Gbp2, Gbp3, Gbp7和Parp12)也下调(补充表S1)。最近的研究报道,CITED2通过抑制IRF1和STAT1(I型和II型IFN激活信号通路的关键介质)充当干扰素刺激基因(ISG)的负调节因子[25,26]。值得注意的是,受CITED2调节的NF-κB和STAT2也在IFN-β和ISG转录中分别发挥核心作用。


                                                        有趣的是,Myn, Zic2, Enpp2, Otx2, Zic5和Rad9b是在D0的Cited2耗竭细胞中排名靠前的下调基因(表1和S1)。Enpp2, Nav2, Zic5和Bmi1在神经嵴和神经发育中发挥重要作用,包括神经模式形成、神经发生和神经干细胞维持[58-63]。鉴于它们的重要性,我们通过qRT-PCR在胚胎第15.5天(E15.5)的新皮层中分析了这些基因在forebrain特异性Cited2条件性敲除(Cited2-cKO)中的表达,该敲除使用Emx1-Cre在神经祖细胞阶段耗竭Cited2,如别处所述[6]。然而,在Cited2-cKO和对照胚胎之间未观察到表达差异(图2B)。

                                                        因此,在ESC中观察到的因Cited2缺失导致的Enpp2, Zic5, Bmi1和Nav2下调,很可能是自发分化和退出多能状态的间接后果,而不是Cited2直接转录调控的结果。在发育中的胚胎中,基因表达可能受更复杂和冗余的调控网络控制,补偿机制可能缓冲了Cited2缺失对这些基因的影响。

                                                        有趣的是,使用Enrichr进行的基因本体(GO)生物学过程富集分析揭示了几种氨基酸转运体的下调(图2C和补充表S2B),包括Slc6a15, Slc43a1, Slc6a14, Slc1a4, Slc1a5, Slc38a3和Slc7a3。氨基酸转运体的表达与ESC的多能性、自我更新和分化,以及囊胚着床、神经和胎盘发育及胎儿生长高度相关[64-66],其在胚胎发育背景下的作用仍有待研究。此外,参与DNA完整性维持和修复以及同源重组的基因,包括Neil3, Rad51b, Rad51c, Rad9b, Fancd2, Prkdc, Mdc1, Rpa3, Poli, Brca2, Dtx3l, Parp9, Usp28和Mcm8,在Cited2耗竭细胞中也表现出表达降低(补充表S2B)。通过qRT-PCR证实了Cited2耗竭细胞中Rad51c和Mdc1表达的下调,而在相同条件下,Rad9b的表达也下降但未达到统计学显著性(第3.5节)。总之,这些观察结果表明,Cited2的缺失破坏了多能性转录网络的稳定性,并诱导了一种失调的、非生理性的分化相关基因表达状态。

                                                        2.ESC中Cited2耗竭增加了与凋亡和分化程序相关的基因表达


                                                        在自我更新条件下培养的Cited2耗竭细胞中上调基因的富集GO生物学过程分析揭示,其中几个基因参与凋亡调节(Anxa1, Tnfr5f12a, Plk2, Htra1, Fhl2, Plaur, Serpinb9, Vtcn1, Ets1, Thbs1, Gadd45g, Lqals3, Sh3rf2, Lqals1, Krt18, Nckap11, Phlda1, Sqtm1, Cryab, Phlda3, Bcl2l1, Nqo1, Hmox1, Tmbim1, F3)(图2C和补充表S3A)。此外,根据Enrichr CheA-2022分析,许多上调基因是小鼠ESC中转录调节因子(包括Jun, Lef1, p53和Suz12)的预测靶标(补充表S3B)。Lef1靶基因(Wnt信号的关键介质)的富集支持了Wnt经典通路可能过度激活的观点,这与之前的观察结果一致,即经典Wnt抑制剂如Dkk1、Wnt5a和Wnt11在Cited2耗竭细胞中下调[15]。Runx2靶基因(Runx2是骨骼发育及相关过程(包括细胞外基质重塑、细胞分化和骨髓功能)的关键驱动因子)在小鼠成纤维细胞中的上调,可能反映了在多能状态下通常被抑制的分化相关转录程序的异位激活,而不是偏向成骨谱系 commitment。在Cited2耗竭细胞中,与p53通路相关的Depdc7, Krt18, Itgb4, Fbxw9, Casq2, Htra1, Adrb2, Parvb, Sbsn, Scn3b, Gadd45g的上调,进一步支持了凋亡调节的变化,尽管p53对于小鼠ESC的凋亡并非必需。
                                                        值得注意的是,Suz12是PRC2的一个亚基,通过在未分化ESC中抑制分化相关基因在维持多能性中起关键作用[67]。因此,通常被抑制的Suz12靶基因的表达可能通过 destabilizing 未分化ESC中谱系相关基因程序的抑制而导致自发分化[15,35,39]。总之,这些观察结果表明,Cited2的缺失破坏了ESC中的转录抑制和应激缓冲,导致分化相关和生存通路的失调激活,从而损害了发育能力。

                                                        3.未分化小鼠ESC中受Cited2、p300和CBP耗竭影响的基因的比较与分析


                                                        p300和CBP都是小鼠ESC中必需的转录共激活因子,通过组蛋白乙酰化(包括组蛋白H3赖氨酸27的乙酰化,H3K27ac)以及通过与转录因子相互作用促进增强子-启动子相互作用来调节多能性和谱系特化[32,33,35,36]。Cited2与p300/CBP功能上相互作用,并已涉足多个信号通路下游的转录反应,表明其在ESC生物学中既有共享的也有背景特异性的作用[68]。为了研究Cited2依赖性转录程序如何与小鼠ESC中由p300或CBP调控的程序相关联,我们将Cited2耗竭后的差异表达基因与已发表的p300或CBP耗竭小鼠ESC的转录组数据集进行了比较[34]。使用一致的基因符号协调和可比的差异表达阈值,我们观察到在这些实验条件下基因集之间的重叠有限。例如,Cited2耗竭后上调的基因中只有1.8%在p300或CBP耗竭的ESC中也上调,而所有三种条件下共享的下调基因占6%(表2)。这些共享的下调基因包括Lefty1和Lefty2,它们是典型的Nodal/Activin通路靶标和早期发育模式形成的关键调节因子,也是Cited2耗竭ESC中受影响最显著的转录本之一。值得注意的是,在Cited2和p300或CBP耗竭后共同下调的基因包括基于Enrichr ChEA-2022分析的核心多能性相关转录因子(如Tcf3, Nanog, Smad3, Oct4和Klf2/4/5)的靶标(补充表S4),表明汇聚在选定的调控节点上,而不是全局共调控。


                                                        由于p300和CBP表现出既重叠又不同的调节功能,我们旨在完善可能受Cited2与p300或CBP共调控的基因列表。为此,我们首先比较了Cited2耗竭和p300耗竭ESC中的基因表达谱,发现Cited2耗竭细胞中16%的下调基因(231个中的39个)在p300耗竭细胞中也下调(表2)。该基因集包括参与I型和II型IFN反应的Ifitm1, Ifitm3和Gbp2,并且根据Enrichr GO和ChEA-2022分析,其中许多基因是小鼠ESC中核心多能性转录因子网络(如Tcf3, Nanog, Smad3, Sox2, Oct4和Klf2/4/5)的靶标(补充表S5A,B)。我们还将Cited2耗竭和CBP耗竭ESC中的基因表达谱进行了比较。有26个基因在两种条件下均下调(表2),占Cited2耗竭细胞中下调基因的11%。与观察到的与p300的重叠类似,通过Enrichr对受Cited2和CBP共同影响的基因进行的生物学过程GO分析鉴定出Lefty1, Lefty2, Ifitm3, Irf1和Gbp2,但富集未达到统计学显著性(补充表S6A)。在Cited2和CBP耗竭细胞中共同下调的基因也是核心多能性转录因子(包括Nanog, Smad3, Oct4, Klf2/4/5和Sox2等)的靶标(补充表S6B)。此外,这些共享基因的一个子集参与炎症反应和造血过程(表2)。

                                                        在Cited2和p300或CBP耗竭细胞中均下调的基因主要与IFN反应通路相关,尽管仅在Cited2-p300重叠中观察到统计学显著性。值得注意的是,这个共享的基因集包括Lefty1, Lefty2和Zic2,它们是早期胚胎模式形成、中胚层特化和神经源能力的关键调节因子。这些观察结果反对广泛的转录等价性,而是表明Cited2在一组有限的发展相关基因上与p300/CBP活性交汇,与其在特定调控节点上微调或稳定p300/CBP依赖性转录的作用一致,而不是作为多能性相关程序的全局共激活因子。

                                                        相应地,上调基因之间的重叠很小,主要限于应激和损伤相关通路。具体来说,Cited2耗竭后上调的基因中有12%在p300耗竭后也上调(表2)。这个共享的基因集包括Vamp8, Lgals1和Pla2g7,它们与炎症反应相关,以及Vamp8, Procr和Btg2,它们参与p53介导的调控通路。与CBP耗竭观察到的重叠较小(4.7%),包括涉及免疫和造血调节的基因,如Anxa1和Lyn(表2)。这些观察结果与已确定的Cited2在免疫调节和造血干细胞维持中的作用一致[8,69],并表明Cited2缺失可能使ESC易向应激和免疫相关的转录状态倾斜。虽然Nckap1最出名的是其在肌动蛋白细胞骨架组织中的作用,但新出现的证据表明它也可能参与免疫相关的调节过程(表2)。

                                                        为了进一步评估CITED2、p300和CBP之间可能的合作(或缺乏合作),我们在E14TG2A ESC中进行了瞬时转染实验,使用由~6 kb Nanog启动子驱动的荧光素酶报告质粒(pNanog-L),连同人FLAG-CITED2、p300、CBP的表达质粒或对照载体,如前所述[35,46,47]。与对照空表达载体相比,单独共转染flag-CITED2、p300或CBP表达质粒均显著增加pNanog-L活性约2倍(图3A),这证实了先前对CITED2[35]以及p300和CBP[32,34,36]的报道。然而,flag-CITED2与p300或flag-CITED2与CBP表达载体的共转染并未对Nanog启动子活性产生相加或协同效应,支持了一个模型,即CITED2、p300和CBP各自都能增强Nanog启动子活性,但没有合作激活的证据。然而,这一结果并不排除在其他内源性位点或染色质背景下的合作,这与我们的转录组交叉分析结果一致,该分析揭示了Cited2耗竭与p300或CBP敲低所导致的基因失调之间的重叠有限。

                                                        4.CITED2调节超出p300 HAT活性的染色质乙酰化能力


                                                        鉴于已确定p300是小鼠ESC中主要的H3K27乙酰转移酶(HAT)[34],以及先前报道CITED2可以抑制p300 HAT活性[70],我们评估了Cited2耗竭是否会改变ESC中p300依赖的乙酰化。为此,从在支持自我更新的培养基中培养、用4HT处理48小时以耗竭Cited2或用乙醇作为对照的ESC中提取全蛋白。提取物用抗p300或对照抗体进行免疫沉淀,以在体外评估HAT活性,然后与粗提全蛋白提取物中的HAT活性进行比较(图3B)。
                                                        结果显示,与对照相比,从Cited2耗竭细胞中获得的粗提物中H3乙酰化有轻微但显著的增加。然而,在从Cited2耗竭和对照细胞中免疫沉淀的p300提取物之间,未观察到HAT活性的差异。因此,在Cited2耗竭后观察到的组蛋白乙酰化能力的增加,是在所测试条件下未检测到p300 HAT活性变化的情况下发生的。或者,未能检测到p300免疫沉淀物的变化可能反映了位点特异性或染色质依赖性的调控,这在体外测定中未被捕获。

                                                        5.Cited2缺失诱导应激相关转录程序并损害基因组维护


                                                        对ESC中Cited2耗竭后失调基因的转录组学分析揭示,参与DNA修复和同源重组的基因,如Neil3, Rad51c, Fancd2, Prkdc, Rpa3, Poli和Brc2,也表现出表达降低(补充表S2B),同时几个凋亡调节基因上调(补充表S3B)。值得注意的是,Bcl21l, Hmox1, Thbs1, Krt18, Plk2, Htra1和Gadd45g是p53的直接靶标,表明与对照细胞相比,Cited2耗竭细胞中p53活性增加。为了验证微阵列数据,进行了qRT-PCR以评估在Cited2耗竭ESC中上调的基因的表达,包括Fhl2, Casq2, Lin28a和Lmma。此外,我们检测了与凋亡相关且受p53上调的基因(Bmi1, Hmox1, Ndrg1, Parp1, Perp, Ptges, Plk2, p53, Rbm24,以及作为阳性对照的p21),以及参与DNA修复的基因(Rad51c, Rad9b和Mdc1)。Grp50,一个在微阵列数据中未受Cited2耗竭影响的基因,也作为对照被包括在内(图4A)。qRT-PCR证实了在ESC中Cited2耗竭后Fhl2和Lmma的表达增强,而Grp50的表达没有显著改变。
                                                        有趣的是,大多数p53靶基因在Cited2耗竭细胞中显著增加了2到5倍。DNA修复相关基因Rad51c和Mdc1的表达在Cited2耗竭细胞中显著降低了1.5到2倍,这表明这些细胞中的DNA修复过程可能受损(图4A),这与先前在Cited2耗竭小鼠ESC中检测到的自发分化和凋亡增加一致[35]。已有研究表明,Cited2通过促进糖酵解和抑制线粒体呼吸来维持造血干细胞(HSC)中低水平的活性氧(ROS)产生[69]。在这些细胞中Cited2耗竭导致ROS产生增加和p53激活,从而触发细胞周期停滞和凋亡,导致HSC池的耗竭[69]。有趣的是,用4HT处理24小时以耗竭Cited2的ESC,与乙醇处理的对照细胞相比,表现出总ROS产生增加(补充图S1A),表明Cited2耗竭细胞中氧化应激水平更高,这可能潜在地导致DNA损伤和p53通路的激活,p53靶基因的上调也表明了这一点(图4A)。因此,我们评估了对照和Cited2耗竭ESC中核γH2AX foci的数量(Ser139磷酸化的组蛋白H2AX,一种由DNA双链断裂(DSB)激活并募集到DNA断裂位点的标记物)(图4B-D,和补充图S1D)。在两种细胞类型的细胞核中存在的γH2AX foci数量上没有观察到显著差异(图4C)。然而,在Cited2耗竭细胞中,γH2AX foci的强度有轻微但显著的增加(图4D和补充图S1D)。此外,通过western blotting检测到的γH2AX表达在4HT和H2O2处理后也比对照条件下升高(图4E和补充图S1C)。总体而言,这些观察结果表明Cited2耗竭细胞可能不会积累比对照细胞更多的DSB。然而,γH2AX foci强度的增加表明Cited2耗竭细胞经历了更大的应激或修复现有DSB的效率降低,这与这些细胞中修复相关基因的下调一致(图4A)。
                                                        为了评估p53过度激活是否导致Cited2耗竭ESC的表型,在存在增加浓度的选择性p53抑制剂pifithrin-α的情况下,用4HT处理C2fl/fl[Cre]细胞以诱导Cited2耗竭。如前所述[35],与乙醇和DMSO处理的对照相比,4HT处理(以DMSO为溶剂)导致培养细胞碎片增加,集落和细胞数量减少。单因素方差分析显示pifithrin-α对细胞增殖有显著影响,F(4,40) = 3.194,p = 0.0229,事后Dunnett检验(以4HT/DMSO为对照)显示,0.5 μM和1 μM pifithrin-α在48小时显著增加了细胞计数(平均差异分别为-30.33和-31.89个细胞,95%置信区间[-57.79, -2.88]和[-59.34, -4.44],校正后p = 0.026和0.018),而5 μM和10 μM没有显著影响(校正后p = 0.38和0.79;图4F,右图)。在Cited2耗竭ESC中观察到的p53活性升高,连同凋亡增加和自发分化,与先前描述p53和Cited2在其他细胞类型中相互作用的报道一致[35]。使用0.5 - 1μM的pifithrin-α处理能部分改善细胞存活和集落形态(图4F,左图),表明p53相关通路可能对观察到的Cited2耗竭细胞表型有贡献。然而,由于pifithrin-α可能存在脱靶效应和剂量依赖性毒性,这些结果支持p53的潜在参与,但没有建立直接的依赖关系。
                                                        除了典型的p53靶标外,在CITED2耗竭后上调的几个基因,包括Ndrg1, Hmox1, Bcl2l1和Thbs1,是已确定的直接HIF-1α靶标[71-73],而其他基因,如Plk2, Krt18和Gadd45g,在特定的应激背景下以缺氧和HIF1依赖的方式被调节。鉴于CITED2通过与p300/CBP竞争结合来负调节HIF1α活性[19,20],我们假设小鼠ESC中Cited2耗竭增强了HIF1α介导的转录。为了评估这一点,我们在经或未经4HT处理的C2fl/fl[Cre] ESC中进行了瞬时转染实验,使用3xHRE-Luc报告基因来量化HIF依赖的转录活性[48]。我们观察到在Cited2耗竭的细胞中3xHRE-Luc显著增加(补充图S1E),表明在缺乏Cited2的情况下HIF活性升高。值得注意的是,已有报道称,在缺氧或应激条件下,持续或过度的HIF1α激活会触发小鼠ESC的应激反应和凋亡,表明HIF1α活性的严格调控对ESC存活至关重要[74,75]。总之,这些结果提出了增强的HIF1α活性可能导致Cited2耗竭后凋亡的可能性,这一假设需要进一步的机制验证。

                                                        6.Cited2耗竭对ESC中H3K27甲基化和乙酰化状态的影响


                                                        如转录组学分析所概述,ESC中Cited2的耗竭导致了Suz12靶基因表达的调节(补充表S3B)。由于Suz12是PRC2复合物的核心组分,通过H3K27甲基化抑制转录活性,我们进行了染色质免疫沉淀(ChIP)实验,以评估Mesp1, Isl1, Dkk1, Wnt5a和Kdr基因启动子处的H3K27三甲基化(H3K27me3)状态,这些基因对早期分化 commitment 至关重要,并且先前被鉴定为Cited2靶基因[15,39]。用于ChIP的提取物从维持自我更新条件下(为简化文本,称为D0)和分化D4的细胞中收集(图5A)。正如预期,与D0相比,在分化D4时,所有检测的调控元件都显示出H3K27me3招募减少,这与它们在分化启动时的早期表达一致。尽管与各自在D0的对照相比,Mesp1, Kdr, Dkk1和Wnt5a启动子的调控区域在Cited2耗竭细胞中表现出H3K27me3占据减少,但这种减少仅在Dkk1达到统计学显著性(图5A)。Mesp1, Dkk1和Kdr处H3K27me3招募的下降趋势与在这些条件下观察到的这些基因转录本表达增加一致(图2A)。鉴于在Cited2耗竭细胞的粗提全细胞提取物中观察到总乙酰转移酶活性增加(图3B),我们在相同的启动子处评估了H3K27(转录活性染色质的标记物)的乙酰化状态。Cited2的耗竭在所检测的时间点没有显著影响所检测启动子的乙酰化状态,除了Wnt5a启动子,其在分化第4天表现出H3K27ac招募减少(图5B)。这一观察结果与先前观察到的ESC分化期间Wnt5a转录本和蛋白表达减少以及细胞外分泌减少一致[15]。
                                                        总之,这些发现支持一个模型,在该模型中,Cited2不是全局建立或去除H3K27me3或H3K27ac所必需的,而是有助于在有限的一组发育调控位点微调染色质状态。在Dkk1等基因处观察到的Polycomb介导的抑制的选择性减少,以及基本保留的启动子乙酰化,表明Cited2的缺失创造了一个染色质环境,该环境是许可的,但对于有效的谱系定向来说配置不当。这种不平衡可能是我们在Cited2耗竭ESC中观察到的多能性维持与发育能力脱钩的基础。

                                                        更多结果和补充图表:doi:10.3390/cells15050450


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                                                        每日汇总固定几本期刊上月最新见刊的生信类研究SCI!
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