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2区7.3分!转录组生信分析+功能验证!IL-1β预刺激BM-MSCs通过NF-κB信号促进中性粒细胞迁移:BAY 11-7082抑制后趋化能力恢复至对照水平!

2区7.3分!转录组生信分析+功能验证!IL-1β预刺激BM-MSCs通过NF-κB信号促进中性粒细胞迁移:BAY 11-7082抑制后趋化能力恢复至对照水平! CNS生信新靶点挖掘
2026-05-17
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导读:间充质干细胞(MSC)治疗急性呼吸窘迫综合征的临床试验结果参差不齐,IL-1β是ARDS的关键促炎因子,但它是如何改变MSC行为的?本研究将人骨髓来源MSC暴露于20 ng/ml IL-1β 1小时或

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间充质干细胞(MSC)治疗急性呼吸窘迫综合征(ARDS)的临床试验结果参差不齐,部分原因可能是患者肺部微环境中炎症因子的差异影响了MSC的功能。IL-1β是ARDS的关键促炎因子,但它是如何改变MSC行为的?本研究将人骨髓来源MSC暴露于20 ng/ml IL-1β 1小时或24小时后,进行bulk RNA-seq、蛋白质组学分析以及中性粒细胞迁移功能实验。结果令人震惊:IL-1β暴露后,MSC中351个基因显著上调,包括CCL2、CXCL1、CXCL5和CXCL8等中性粒细胞趋化关键因子;蛋白质水平验证同样显著升高。更为关键的是,IL-1β刺激的MSC条件培养基使中性粒细胞迁移数量显著增加,而这种效应可被NF-κB抑制剂BAY 11-7082完全阻断——抑制后迁移水平恢复至未刺激对照水平。本研究首次从机制上证明:宿主炎症环境中的IL-1β通过NF-κB通路将MSC“推”向促炎表型,可能解释了为何部分ARDS患者MSC治疗无效甚至加重病情。

今天给大家解读一篇4月发表在《Stem Cell Research & Therapy》上的题目为“IL-1β modulates inflammatory response of human bone marrow-derived MSCs and neutrophil recruitment in vitro via NF-kB-associated signaling.”的文章。该研究针对 MSC 治疗 ARDS 临床效果不稳定的问题,探索了宿主微环境中炎症因子 IL-1β 对 MSC 功能的影响。研究人员在体外用 IL-1β 处理 BM-hMSC,通过 RNA 测序、蛋白定量和中性粒细胞迁移实验,证实了 IL-1β 能够激活 NF-kB 信号,上调 MSC 表达多种趋化因子,显著增强其招募中性粒细胞的能力。研究指出,在 IL-1β 水平高的 ARDS 患者肺部环境中,输入的外源性 MSC 可能会被诱导成一个“促炎”角色,反而加剧中性粒细胞浸润,这可能是导致临床试验结果不一致的原因之一。请持续关注我们,每天为您解读最新见刊的文献!)想薅生信资料羊毛?直接在对话框回复 “资料”,免费领取干货大礼包!包括数据集、绘图代码、图表复现、思路总结、参考文献……0代码!鼠标点点点即可轻松完成5-10分生信SCI全文复现!

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团队成员合影(位于上海陆家嘴中心,可随时预约参观)


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题目:《IL-1β通过NF-kB相关信号通路调节人骨髓来源的MSCs的炎症反应及中性粒细胞的体外募集IL-1β modulates inflammatory response of human bone marrow-derived MSCs and neutrophil recruitment in vitro via NF-kB-associated signaling

发表期刊:Stem Cell Research & Therapy

影响因子:7.3

研究背景


  1. 临床问题
    基于间充质干细胞 (MSC) 的疗法在治疗急性呼吸窘迫综合征 (ARDS) 的临床试验中效果不一,甚至存在矛盾结果。
  2. 核心假设
    这种疗效的异质性很可能是多因素的,其中宿主微环境(特别是炎症状态)是影响 MSC 功能的关键因素之一。
  3. 前期发现
    研究团队前期已发现,ARDS 患者支气管肺泡灌洗液 (BALF) 中高水平的 IL-1β 与 MSC 的体外激活相关,但具体机制不明。
  4. 研究空白
    目前尚不清楚 IL-1β 具体如何改变 MSC 的功能,尤其是它如何影响 MSC 与宿主免疫细胞(如中性粒细胞)的相互作用。



                            CNSknowall 平台 Pubmed+AI 快速提炼全文要点

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                            研究思路:

                              1. 体外模拟
                                使用 20 ng/ml 的 IL-1β 处理人骨髓来源的 MSC,模拟其在炎症微环境中被激活的状态。
                              2. 基因与蛋白层面探索
                                通过批量 RNA 测序分析 IL-1β 刺激后MSC的转录组变化,并利用 Olink 和 ELISA 技术验证关键蛋白(如趋化因子 CCL2、CXCL1、CXCL5、CXCL8)的分泌情况。
                              3. 功能验证
                                利用 Transwell 迁移系统,以 IL-1β 处理过的 MSC 的条件培养基作为趋化源,检测其对原代人中性粒细胞的体外招募能力。
                              4. 通路验证
                                引入 NF-kB 通路抑制剂(BAY 11-7082),观察在阻断该通路后,IL-1β 对 MSC 趋化因子分泌及中性粒细胞招募能力的影响是否发生变化,从而揭示 IL-1β 作用的关键信号通路。


                              研究亮点:

                                1. 机制探究
                                  该研究通过联合 RNA 测序、蛋白质组学分析和体外功能实验,系统地揭示了 IL-1β 调控 MSC 功能及与免疫细胞(中性粒细胞)相互作用的潜在分子机制。
                                2. 临床相关性
                                  研究结果直接关联到 ARDS 的病理机制(以中性粒细胞在肺部积聚为特征),为解释为何不同患者在接受 MSC 治疗后临床效果存在显著异质性提供了新的理论依据。
                                3. 通路验证
                                  通过使用 NF-kB 抑制剂,在功能实验(中性粒细胞迁移实验)和蛋白水平(Western blot)上双重验证了 NF-kB 通路在该过程中的关键驱动作用。


                                研究结果:

                                  1. 转录组变化
                                    与未刺激的对照组相比,IL-1β 暴露 1 小时后,BM-hMSC 中有 351 个基因显著上调。这些基因富集于“免疫应答”、“对生物刺激的反应”等生物过程,其中中性粒细胞招募的关键趋化因子基因(如 CCL2CXCL1CXCL5CXCL8)和 NF-kB 信号通路相关基因(如 NFKBIANFKBIZ)显著上调。
                                  2. 蛋白水平验证
                                    ELISA 和 ELLA 检测证实,IL-1β 刺激后,BM-hMSC 分泌的 CCL2、CXCL1、CXCL5 和 CXCL8 蛋白水平均显著高于对照组 (p < 0.0001)。
                                  3. 功能增强
                                    中性粒细胞迁移实验表明,IL-1β 处理过的 BM-hMSC 的条件培养基对中性粒细胞的招募能力显著高于对照组 (p = 0.0272)。
                                  4. 通路依赖
                                    • 使用 NF-kB 抑制剂 BAY 11-7082 后,IL-1β 诱导的 CXCL1 分泌被完全抑制,水平回落至与未刺激对照组无异(p < 0.0001)。
                                    • 同样,NF-kB 抑制剂显著削弱了 IL-1β 处理的 MSC 招募中性粒细胞的能力,使其水平与未刺激对照组无显著差异 (p = 0.9118)。


                                  研究总结:


                                  • 结论
                                    IL-1β 能够通过激活 NF-kB 信号通路,改变 BM-hMSC 的基因和蛋白表达谱,使其向促炎表型转化,显著增强其招募中性粒细胞的潜能。
                                  • 临床启示
                                    该发现为理解 MSC 治疗的异质性提供了重要机制解释。即,在 IL-1β 水平较高的 ARDS 患者肺部,输入的 MSC 可能非但不能抑制炎症,反而会加剧中性粒细胞的进一步浸润和后续的组织损伤,导致病情恶化。这凸显了根据患者的具体免疫微环境(如炎症因子谱)来筛选或预处理 MSC 的重要性。
                                  • 研究局限性
                                    作者坦诚指出了研究的局限性,包括仅使用了一种浓度的 IL-1β (20 ng/ml)、一个广谱的 NF-kB 抑制剂、以及缺乏体内动物实验的验证。因此,这些结论外推至临床 ARDS 患者仍需谨慎,并需要进一步的体内研究来证实。同时,不同供体来源的 BM-hMSC 在分泌量上存在差异,但一致地对 IL-1β 表现出强烈的促炎表型转换。





                                  结果译文:

                                  1.IL-1β显著增加BM-hMSCs的代谢活性


                                  为初步确定IL-1β是否对BM-hMSCs具有毒性,我们将细胞暴露于20 ng/ml IL-1β 1小时或24小时。重要的是,通过乳酸脱氢酶释放测定,BM-hMSCs能够耐受IL-1β。IL-1β暴露的BM-hMSCs释放的LDH水平显著低于未刺激的对照BM-hMSCs(p = 0.0006,补充图1A和C)。此外,与未刺激的对照细胞相比,IL-1β暴露的BM-hMSCs的代谢活性显著增加(p < 0.0001,补充图1B)。


                                  2.IL-1β改变BM-hMSCs的基因表达谱


                                  为了确定IL-1β对BM-hMSCs基因表达的影响,我们进行了bulk RNA测序。研究的总体方案见图1A。标准化基因计数方差的PCA分析显示,样本按刺激条件聚类(图1B)。热图展示了刺激和未刺激BM-hMSCs的基因计数Z分数(图1C)。这些数据清楚地表明,IL-1β在暴露1小时即可激活BM-hMSCs,改变其基因表达谱。与未刺激的对照细胞相比,IL-1β暴露的BM-hMSCs中发现351个基因上调(log2倍数变化>2,校正后p<0.05),36个基因下调(log2倍数变化<-2,校正后p<0.05)。如图1D所示,有一组基因聚集在火山图的右上角,具有非常高的log2倍数变化和低的log10 p值。为了更详细地探索这些基因,我们使用热图绘制了前20个差异表达基因(图2A)。有趣的是,在前20个基因中,我们发现趋化因子(C-C基序)配体2(CCL2)、趋化因子(C-X-C基序)配体1(CXCL1)、趋化因子(C-X-C基序)配体5(CXCL5)和趋化因子(C-X-C基序)配体8(CXCL8),这些都是参与中性粒细胞募集的基因。前20名列表中的其他基因包括参与核因子κB信号通路调控的基因,如NF-κB抑制剂α(NFKBIA)和NF-κB抑制剂ζ(NFKBIZ)(补充图2)。为了进一步验证这些观察结果,我们使用ELLA和ELISA测定了BM-hMSCs分泌组中CCL2、CXCL1、CXCL5和CXCL8/IL8的蛋白水平。结果表明,与未刺激的对照相比,IL-1β暴露的BM-hMSCs中CCL2(p < 0.0001)、CXCL1(p < 0.0001)、CXCL5(p < 0.0001)和CXCL8(p < 0.0001)均显著上调(图2B)。

                                  3.暴露于IL-1β导致参与生物刺激应答和免疫应答的基因上调


                                  为了更好地理解和描述差异表达基因的生物学功能,我们对过表达的基因列表进行了GO富集分析。在这里,我们发现与未刺激的BM-hMSCs相比,IL-1β改变的基因属于参与生物体间相互作用、对生物刺激的应答、对其他生物体的应答、对外部生物刺激的应答以及免疫应答的生物学过程(图2C)。为了进一步探索应关注的通路,我们绘制了前5个GO术语及其关联基因的聚类网络图(补充图3)。聚类网络图清楚地表明,前4个通路聚类在一起,而免疫应答节点单独聚类。考虑到免疫应答节点与其他4个通路相比具有不同的基因网络,以及其在ARDS病理中的生物学相关性,我们决定将研究重点放在免疫应答通路中包含的基因上。为了进一步探索免疫应答通路,我们绘制了该通路中涉及基因的热图(图3)。我们在火山图中被鉴定为一个簇的CCL2、CXCL1、CXCL5和CXCL8基因(图1D),被发现参与了免疫应答通路。这些都是参与中性粒细胞募集并对其至关重要的基因,这与ARDS发病机制中涉及的中性粒细胞以及我们之前的发现相关[12]。有趣的是,参与调控信号通路(尤其是NF-κB信号通路)的基因,如REL、NFKB1、NFKB2、RELB、NFKBIA、NFKBIZ、TNFAIP3、TRAF2和TIFA(图3),在IL-1β暴露的BM-hMSCs中也出现差异上调。

                                  4.暴露于IL-1β通过NF-κB信号通路部分增加中性粒细胞募集


                                  基于免疫应答通路中的发现,我们接下来想要评估IL-1β刺激的BM-hMSCs在中性粒细胞募集中的作用。我们利用Transwell系统评估来自IL-1β暴露的BM-hMSCs的条件培养基是否比未刺激的BM-hMSCs增加中性粒细胞募集能力(图4A)。这些结果表明,与未刺激的对照相比,IL-1β刺激的BM-hMSCs显著增加了中性粒细胞迁移(p = 0.0272,图4B)。接下来,我们想要评估这种中性粒细胞募集能力是否通过NF-κB通路驱动,因为在RNA测序数据中鉴定出多个编码参与NF-κB信号通路蛋白的基因。因此,我们在有或没有加入NF-κB抑制剂BAY 11-7082的情况下进行了中性粒细胞迁移实验。为了首先验证抑制剂有效,我们测量了经IL-1β暴露(有或无NF-κB抑制剂)的BM-hMSCs条件培养基中CXCL1的水平。结果表明,与未刺激细胞相比,暴露于IL-1β的BM-hMSCs培养基中的CXCL1表达显著增加(p < 0.0001,图4C)。相反,在暴露于IL-1β联合NF-κB抑制剂的BM-hMSCs条件培养基中,与仅暴露于IL-1β的BM-hMSCs相比,观察到CXCL1显著降低(p < 0.0001)。未刺激细胞与同时暴露于IL-1β和抑制剂的BM-hMSCs之间未观察到显著差异(p > 0.9999)(图4C)。为了进一步验证NF-κB抑制,进行了Western blot分析,证实了在存在BAY 11-7082抑制剂的情况下,经IL-1β处理的BM-hMSCs中NF-κB通路激活减少(图4D)。总之,这些结果确保我们抑制剂效果良好,因此我们在有或无NF-κB抑制剂的情况下进行了中性粒细胞迁移实验。与仅暴露于IL-1β的BM-hMSCs相比,NF-κB抑制显著抑制了中性粒细胞募集能力(p = 0.0282)。重要的是,未刺激的BM-hMSCs与同时暴露于IL-1β和NF-κB抑制剂的细胞之间没有发现显著差异(p = 0.9118)。综上所述,这些数据表明,IL-1β刺激通过NF-κB信号通路导致中性粒细胞募集增加。

                                  更多结果和补充图表:doi:10.1186/s13287-026-05029-x



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                                  【声明】内容源于网络
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