类器官小历史
直到上世纪后半叶,体外分散性细胞培养的技术逐渐趋于成熟,并且逐渐衍生发展出新的方法,比如3D细胞培养。
在1965~1985年代,出现了最早的“类器官”模型,但是当时由于早期的类器官模型需要大量起始细胞,通量低,体外活力低,因此应用价值有限。
图1.PubMed搜索“Organoids”,体现出类器官在2014年后开始“复兴” 图片来源:Cell 165, June 16, 2016
正式介绍类器官
干细胞来源,包含组织特异性细胞
具有一定原器官功能的3D结构
细胞的组织方式与原器官相似
形成类器官的干细胞主要有两种来源,一种是胚胎多潜能干细胞(ES)及其而来的诱导多能干细胞(iPS);另一种则是具有器官限制性的成体干细胞(aSC)。
目前,已经陆续报道了多种体外类器官模型,例如胃肠道类器官、脑类器官、肝脏类器官等。
图2.PSCs来源的类器官种类及其相关发育调控信号通路。图片来源:Cell 165, June 16, 2016
类器官广泛的应用前景
1,研究建立各种新型的、特异性的类器官,构建类器官生物芯片
图3:体外培养的肝脏初生组织-肝芽。
使用三种细胞共培养,其中两种细胞分别表达EGFP及mCherry荧光蛋白(LionheartFX拍摄)
2019年,来自美国Georgia Tech的研究团队开发了一种新型的人类骨髓(hBW)类器官芯片,经过精心设计,这个芯片能够模拟骨内膜、中央骨髓及外围血管三种微环境,相关结果同年12月发表在冷泉港实验室运维的BioRxiv上。
图5:上A:LionheartFX相差模式对MSC细胞成像并定量计数,下A:采用绿色荧光成像拍摄绿色荧光鬼笔环肽标记的内皮细胞形成血管结构。
2,以类器官为模型,研究疾病的特异性致病机制
辛辛那提儿童医学中心的研究团队通过体外肠道类器官模型,研究发现AC6作为重要的腺苷环化酶家族参与霍乱毒素导致的机体严重腹泻。
图6:使用BioTek的成像系统拍摄微孔板内肠道类器官,并通过定量分析类器官的面积评价Adcy6基因缺陷在药物作用下的球形结构变化。J. Biol. Chem. (2018) 293(33) 12949–12959
近期,约翰·霍普金斯大学的研究人员建立并阐明了一种可应用于解决癌症研究、胚胎发育以及受缺氧严重影响的病理等广泛生物学问题的缺氧命运图谱系统(Fate-mapping system),并分别在2D细胞、3D细胞球、肿瘤类器官结构上验证了该图谱系统能够表征癌症发展到转移过程中缺氧细胞的命运,证明缺氧后细胞转移潜能增强,其结果发表在Nature communications杂志(NATURE COMMUNICATIONS | (2019) 10:4862)。文中多次使用BioTek的成像设备(Cytation5 &LionheartFX)对2D,3D及类器官结构进行成像,涉及应用包括活细胞动态监测、3D细胞球侵袭实验、组织免疫荧光、细胞计数等。
图7:正常氧气浓度培养和低氧培养条件下,Fate-mapping system指示乳腺肿瘤类器官内的缺氧情况(细胞缺氧时,红色荧光报告蛋白(DsRed)表达关闭,绿色荧光蛋白(GFP)开启表达并永久标记。)
3,基于类器官的体外高通量药物筛选及精准治疗
新药研发周期漫长,投入成本巨大,采用类器官代替传统的贴壁细胞开展高通量筛选,能够极大提高靶标候选药物进入后期实验的有效性。此外,由于肿瘤具有极高的异质性,同样的药物在不同的患者中药物敏感性、耐药周期差异巨大,通过建立肿瘤患者的类器官样本库,能够在体外快速有效的实施精准肿瘤药物测试。
来自美国凯斯西储大学的研究团队,Craig Hodges博士及其团队开发了可在1536孔板内培养的肠道类器官,用于筛选靶向CFTR基因的抗囊性纤维化的药物。BioTek的成像系统能够支持1536孔板的自动化成像、活细胞培养及肠道类器官膨胀分析等功能,极大支持了他们开展相关的筛选工作。
图8:Case Western Reserve University, Schoolof Medicine
Craig Hodges 博士(右侧) 和他的研究生 DanielMcHugh (左侧)使用BioTek的 Lionheart™ FX自动化显微镜用于高通量筛选CFTR基因调节化合物
BioTek为大家提供超性价比的类器官分析检测平台
图片展示96孔板基质胶中培养的3D结构的肿瘤类器官,使用Cytation5的Z轴层切功能观察
视频展示了LHFX活体培养下的肠道类器官CFTR基因激活后迅速膨胀

1536孔板整板自动成像~就是这个功能迷倒了Craig Hodges 博士哟
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