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细胞侵袭-Transwell 曝光癌细胞的入侵路径

细胞侵袭-Transwell 曝光癌细胞的入侵路径 捷倍斯生物
2023-12-07
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导读:细胞侵袭是细胞迁移的一种,与细胞迁移密不可分,是指细胞在原位突破基底膜,然后内渗进入血管、淋巴管的过程,即入侵的细胞(如恶性肿瘤细胞)穿过胞外基质层或基底膜基质层(BME)从一个区域侵入到另一个区域.

一、细胞迁移/侵袭简介

细胞迁移(Cell Migration)也称为细胞爬行、细胞移动或细胞运动,是指细胞在接收到迁移信号或感受到某些物质的梯度后而产生的移动。细胞迁移为细胞头部伪足的延伸、新的黏附建立、细胞体尾部收缩在时空上的交替过程。

细胞迁移是正常细胞的基本功能之一,是机体正常生长发育的生理过程,也是活细胞普遍存在的一种运动形式。在胚胎发育、血管生成、伤口愈合、免疫反应、炎症反应、肿瘤转移等多个过程中都涉及到细胞迁移。由于转移性疾病是导致癌症死亡的关键因素,因此了解细胞迁移机制对于癌症研究至关重要。

肿瘤细胞侵袭模型(Novikov et al., 2021)。

细胞侵袭(Cell Invasion)是细胞迁移的一种,与细胞迁移密不可分,是指细胞在原位突破基底膜,然后内渗进入血管、淋巴管的过程,即入侵的细胞(如恶性肿瘤细胞)穿过胞外基质层(Extracellular Matrix,ECM)或基底膜基质层(BME)从一个区域侵入到另一个区域,在侵袭到新区域之前,ECM/BME被细胞内的蛋白酶降解。细胞侵袭常发生于伤口修复、血管形成和炎症反应以及组织的异常浸润、肿瘤细胞转移等过程中。因此,研究其中的机制对多种生理/病理过程都有着重要的意义。而肿瘤细胞的侵袭性是肿瘤相关信号通路、药物治疗、靶向治疗、致癌/抑癌基因等肿瘤学研究的一个重要指标。

二、肿瘤转移的几个关键步骤

肿瘤转移是癌症进展中一个复杂而关键的过程,在此过程中癌细胞从原发肿瘤扩散到身体的其他部位,形成继发性肿瘤或转移瘤,这一系列过程统称为侵袭-转移级联。原发肿瘤的转移过程可分为几个关键步骤(2)

  • 局部侵袭(Local Invasion)附近细胞的细胞外基质(ECM)和基质细胞层。转移的第一步是肿瘤细胞对局部附近组织的侵袭。原发肿瘤细胞外蛋白酶如机制金属蛋白酶(MMP)的分泌,可降解细胞外基质(extracellular matrix, ECM),从而使肿瘤细胞穿透周围组织进入循环系统。
  • 内渗(Intravasation)进入淋巴管或血管腔。局部侵袭后,部分癌细胞进入附近的血管或淋巴管。 这个过程称为内渗。这些血管和淋巴管为癌细胞提供了一种传播到体内远处部位的途径。
  • 生存于循环系统(Survival in the circulation)进入血液或淋巴系统的癌细胞面临着重大挑战,包括剪切力、免疫监视和失巢凋亡(细胞从ECM脱离时发生的一种细胞死亡)。为了在循环系统中生存,癌细胞可能会形成聚集体或团块并逃避免疫检测,这些细胞被称为循环肿瘤细胞(circulating tumor cells(CTCs))。
  • 到达解剖学上的远端器官组织。一旦肿瘤细胞进入循环,这些细胞就会被携带到全身。 最终,它们可能会滞留在毛细血管床上,其中较小的血管限制了它们的运动。 这种停滞是由于癌细胞上的粘附分子与次要部位血管内皮细胞之间的相互作用所致。
  • 外渗(Extravasation)入远端正常器官组织细胞。癌细胞必须离开血流或淋巴管才能形成继发性肿瘤。  癌细胞的粘附特性发生变化,通过穿透将血管腔与间质微环境分离的内皮细胞和周细胞层,从血管腔内进入组织,这一过程被称为外渗。
  • 在新环境中的最初生存和微转移。一旦癌细胞成功外渗,它们就会面临在其在远端组织微环境中生存的挑战。这些包括逃避免疫反应、适应新的微环境以及增殖形成继发性肿瘤。 继发部位的微环境可能与原发肿瘤不同,这些微环境的差异可能包括基质细胞的类型、ECM成分、可用的生长因子和细胞因子,甚至是组织本身的微结构。癌细胞需要适应这些变化才能生存和生长。
  • 转移性定植(Metastatic Colonization)即重新启动增殖程序并形成转移灶。经历过这七个步骤后原发性肿瘤可以产生宏观的、临床可检测到的肿瘤生长,通常称为转移定植。为了促进其生长,转移性癌细胞通常通过称为血管生成的过程诱导新血管的形成。 这确保了营养物质和氧气的持续供应,以支持继发性肿瘤的发展。继发性肿瘤可以继续侵入周围组织,并可能通过血流或淋巴系统进一步扩散。 这个过程会导致体内不同部位形成多个继发性肿瘤[1-3]。
肿瘤细胞体内转移过程 
Valastyan S, Cell. 2011;147(2):275-292. doi:10.1016/j.cell.2011.09.024

检测细胞迁移能力最常见的方法是细胞划痕实验Transwell小室检测,两者的区别在于细胞划痕简单经济,模拟单层细胞在2D平面的迁移;而Transwell成本较高,模拟细胞在3D空间的迁移。另外,Transwell也是检测细胞侵袭能力最常用的手段

三、细胞划痕实验

实验原理简介:

细胞划痕实验(Scratch Assay or Wound Healing)是一种操作简单,经济实惠的研究细胞迁移的体外试验方法,类似体外伤口愈合模型,主要是用来检测细胞在2D空间中的一个迁移能力是在体外培养皿或平板培养的单层贴壁细胞上,用微量枪头或其它硬物在细胞生长的中央区域划线,去除中央部分的细胞,然后继续培养细胞至实验设定的时间依据划痕边缘细胞逐渐进入空白区域使“划痕”愈合的能力,判断细胞生长迁移能力。因其类似体外伤口愈合过程,又名伤口愈合实验。

当细胞长到融合成单层状态时,在融合的单层细胞上人为制造一个空白区域,称为“划痕”,划痕边缘的细胞会逐渐进入空白区域使“划痕”愈合,在一定程度上模拟了体内细胞迁移过程。

图3 划痕实验示意图(Hulkower et al., 2011)。

操作步骤:

培养板划线—铺板—细胞划线—清洗—细胞培养观察—结果分析

注意事项:
1、铺板时一般选择6孔板,因为6孔板大小适中,可保证有相当距离的平直划痕,便于观察。而且因为有5条定位线,与划痕相交,这样就有10个可固定监测点,不作重复,误差也很小。但是如果实验需要高通量初筛,也可以用12或24孔板。

2、实验时应注意细胞生长状况,选择适当的细胞接种浓度。对不同类型细胞要观察细胞贴壁率等,确定实验时细胞种板数量和培养时间,保证培养终止时密度适当。

3、减少细胞增殖对实验结果的影响,应选择加入无血清或血清浓度低(≤2%)的培养基进行细胞培养。

细胞划痕的优点:

1、操作简便,不需要借助特殊的实验仪器;2、实验成本低。
细胞划痕的缺点:
1、操作者划痕易出现宽度不均一,影响划痕愈合度评估;2、划痕会对周围细胞造成机械损伤,影响细胞活性;3、不太好排除增殖带来的影响。

四.Transwell小室检测实验

实验原理简介
Transwell顾名思义是“穿孔实验”,即将小室放入孔板中(常见的是24孔板),小室中含有密密麻麻的小孔,将细胞悬液加到小室中,小室放在加入完全培养基的24孔板内,细胞可通过形变穿过小室中的孔而跑到营养更丰富的小室外部并贴在外侧。通过对小室外部的细胞进行染色计数,就可以判断细胞的迁移与侵袭能力的强弱。

它通常用于研究细胞对各种刺激(如生长因子、趋化因子或细胞外基质成分)的迁移、趋化性和侵袭[4]Transwell实验对于评估细胞通过多孔屏障迁移或侵袭的能力特别有用,多孔屏障模拟细胞必须穿过体内组织的生理条件Transwell实验涉及Transwell小室(插入物)和孔板,它们是一种由分隔两个隔室的渗透膜组成的装置。 通常,顶部室充满细胞,而底部室包含化学引诱剂或诱导细胞迁移的物质。多孔膜允许细胞通过膜上的小孔从顶部室迁移到底部室。

4 Transwell实验原理 
Justus CR, Methods Mol Biol. 2023;2644:349-359. doi:10.1007/978-1-0716-3052-5_22

Transwell实验根据是否在小室内添加基质胶分为两种类型(图4):

迁移测定(未在小室内添加基质胶)在这种类型的测定中,细胞从顶部室迁移到底部室,但不需要降解或侵入膜。 这种类型的测定测量细胞响应化学引诱剂梯度而移动的能力

Transwell细胞迁移操作步骤:

细胞培养与处理—Transwell小室准备—制备细胞悬液—接种细胞至上方小室—细胞固定—细胞染色—封片—细胞观察计数

侵袭测定(需在小室内添加基质胶)在侵袭测定中,细胞不仅通过多孔膜迁移,还需要通过通常涂覆在膜顶部的细胞外基质(ECM)层降解或侵袭。例如,侵袭测定通常用于研究肿瘤细胞的侵袭行为。Transwell实验是体外研究细胞行为的重要工具,可以深入了解各种生物过程,包括癌症转移、免疫细胞迁移和组织发育。通过计算小室底部或培养液内迁移或入侵的细胞数量,或通过测量各种细胞参数(例如细胞运动和趋化反应)的变化来量化细胞行为。
Transwell细胞侵袭操作步骤:
细胞培养与处理—包被基底膜—水化基底膜—制备细胞悬液—接种细胞至上方小室—细胞固定—细胞染色—封片—细胞观察计数

Transwell实验注意事项:

1. 基质胶在室温下溶剂凝固,铺胶过程全程需要在冰上操作。
2. 基质胶浓度也是影响细胞迁移和侵袭的因素之一,所以基质胶的浓度和稀释比例需根据供应商提供的信息和实验具体情况调整,必要时可设置预实验摸索最佳浓度和稀释比例。一般常用浓度为1mg/mL。
3. 铺胶时,尽量垂直小室底部在小室底部中间加入,可避免气泡的产生。
4. 吸出小室内未结合的基质胶时需确保移液管的尖端不会刮伤凝胶层表面。
5. 不同细胞的迁移和侵袭能力不同,可设置一系列细胞密度梯度摸索合适的细胞接种密度。
6. 小室的放置过程经常有气泡产生,一旦产生气泡,下层培养液的趋化作用就减弱甚至消失,因此需特别留心。一旦出现气泡,需将小室提起或用枪头去除,去除气泡后重新放置。
7. 接种细胞1-2小时后,可对培养板进行检查,确保没有大气泡产生。但有时会观察到有极小的汽包产生,但并不影响细胞迁移和侵袭,也可轻轻敲击孔板去除。
8. 用PBS清洗小室时,需避物理触碰小室底部。可以准备几个无菌烧杯或培养皿,倒入适量PBS,依次涮洗,可提高效率。

9. 拍照前需适当晾干小室,水分会影响镜下视野。

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