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eDNA技术如何实现“鱼口普查”

eDNA技术如何实现“鱼口普查” 捷倍斯生物
2025-03-20
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导读:eDNA技术,则像一位精明的侦探, 不需要亲自下水;只需收集一点湖水,就能通过水中的DNA线索,破译出湖里住着哪些“居民”。如果被鲨鱼咬了、只要留着擦拭伤口的那块纱布,仍然可以通过eDNA技术检测出当

1.什么是eDNA

首先,DNA是一种我们在生物课上经常听到的词汇,它是指脱氧核糖核酸,是所有生物体遗传信息的载体。DNA像是一本书,里面写满了每个生物独特的“生命密码”。它决定了生物的样貌、行为以及生长方式。

那么,环境DNA-Environmental Samples DNA(以下简称eDNA 是什么呢?简而言之,eDNA是指生物体在环境中释放出的DNA片段。无论是在空气中、土壤里,还是水中,所有生物在活动时都会留下微小的痕迹,比如掉落的皮肤细胞、排出的粪便、或黏液。通过这些遗留物质,科学家可以从环境中直接提取DNA,而不必抓住生物本身。

想象一下,你走在沙滩上,脚下留下了一串串的脚印。同样地,鱼类、贝类、微小的浮游生物等海洋生物,在水中活动时也会“留下痕迹”,而这些痕迹就包含在它们释放的DNA片段中。这些散落在水体中的DNA,就是我们所说的环境DNA。

上个世纪90年代初,科学家们开始尝试从环境样本中提取DNA,并用于物种鉴定。到了21世纪初,高通量测序技术的出现,极大地推动了eDNA技术的发展,使得科学家们能够从环境样本中同时检测到大量的物种。随着技术的不断进步,过去十年来,eDNA技术在生态学、保护生物学等领域得到了广泛应用,并不断涌现出新的研究成果。

鲸鲨作为地球上最大的鱼类,鲸鲨在生物分类学上独树一帜。

图源:摄影师宋刚 

2.环境DNA有什么优势?

与传统的生物采样和观察方法相比,eDNA具有很多独特的优势。它是一种非侵入性的技术,意味着科学家不需要捕捉或扰乱生物体,便能获得所需的遗传信息。这对于保护那些脆弱或濒危的生物具有非常重要的意义。
传统方法就像是一位老渔夫, 想要了解湖里的鱼,必须亲自下网捕捞,甚至用鱼竿逗它们上钩。这种方法虽然直接,但也会惊扰到鱼群,而且往往只能捕捉到那些大个子、喜欢热闹的鱼。对于那些躲在水草丛中、胆小害羞的小鱼,或者已经游到远方的鱼,老渔夫就无能为力了。
而eDNA技术,则像一位精明的侦探, 不需要亲自下水;只需收集一点湖水,就能通过水中的DNA线索,破译出湖里住着哪些“居民”。即使是一片小小的鱼鳞、一滴黏液,都能成为侦探破案的关键证据。eDNA不仅能找到那些大鱼,还能发现那些藏在水底的小鱼小虾,甚至连那些已经离开的鱼,也能通过残留的DNA找到蛛丝马迹。前段时间“海洋与湿地”(OceanWetlands)曾经报道过,如果被鲨鱼咬了、却不知道是什么鲨鱼咬的,那么只要留着擦拭伤口的那块纱布,仍然可以通过eDNA技术检测出当时咬人的到底是哪种鲨鱼。
传统方法就像一架老式相机, 只能拍下眼前的一张照片,告诉我们现在湖里有什么鱼;eDNA技术则像一台时光机, 它能根据水中的DNA记录,还原出湖里过去一段时间内的“鱼口普查”情况,让我们了解鱼群的迁徙路线、繁殖季节,甚至还能推测出湖泊的历史变迁。

3.环境DNA技术的操作方法

eDNA技术主要包括样品采集、DNA提取、PCR扩增及测序、生物信息学分析。在不同的研究中,采样环境、目标物种等重要因素会有差异,从而使不同的技术环节方法有所变化。
在水环境应用中,为减少外界环境因子对水体中遗留的生物DNA的影响,样品采集时不宜对水体造成过大的扰动,通常采集研究区表层水即可[7]。样品采集过程中要格外注意外来污染或交叉污染,必须严格佩戴一次性手套并及时更换,以免给最后的物种识别过程带来干扰。在采集平行样本的同时设计空白样本[8],如将一瓶加盖的蒸馏水保存在冰上,以检查现场工作期间的污染。样品采集后要立刻冷藏防止水体中生物DNA降解,并在最短的时间内进行初步处理。
样品采集后,采用滤膜法和沉淀法均可以达到浓缩样品提取DNA的目的,且两种方法各有优势,沉淀法所需水样明显少于滤膜法,但滤膜法可获得更高浓度的DNA,当前滤膜法中的抽滤方式应用较多。DNA的提取方法包括物理法、化学法、生物法等,也有研究选择相应的DNA试剂盒提取水环境中的DNA。


捷倍斯生物(GBCBIO®)磁珠法环境样品DNA提取试剂盒-- MagIso Environmental Samples DNA Kit是专门为KingFisher, 达安、天隆等核酸提取仪设计的产品,适合于从水、土壤与粪便样品中提取核酸。试剂盒基于超顺磁性的磁性粒子纯化技术,采用独特的腐殖酸除去液能够有效去除腐殖酸等,能有效去除金属等抑制因子。仪器运行时间只需50分钟。得到的DNA可直接用于定量PCR和二代测序等实验。
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  步骤: 水样品

1. 使用直径为47mm,孔径为0.22-0.45μm的滤膜对水体样品进行过滤,过滤体积取决于水体样品的浊度和微生物的含量。用剪刀将1/2张或整张过滤后的滤膜尽量剪碎置于2ml离心管中,以便于后面的裂解步骤。

2.加入0.4g Glass Beads,再加入0.7ml Buffer C150μl Buffer C2。涡旋器高速震荡3-5min

注意: Buffer C2是我司独特的腐殖酸除去剂,50μl对大部分样品来说足以有效除去腐殖酸等抑制因子。对一些腐殖酸含量特别丰富的土壤, Buffer C2的量可以适当增加,但不能超过150μl,否则会严重影响DNA的得率。

3. 加入100μl Buffer C3C3如有沉淀37水浴完全溶解后再用),涡旋混匀70水浴处理10min。期间振荡几次。

注意:如果要纯化革兰氏阳性菌的DNA,请在70处理完后,再90℃水浴处理5min

4. 12000 rpm(~13000×g)离心1钟,转600μl上清到1.5ml离心管中,加入180μl Buffer C4混匀。

5 冰上放置5min12000 rpm(~13000×g)离心5钟。 转移500μl上清到新的1.5ml离心管中。

注意:转移上清时确保不要吸取到沉淀,转移的上清量最好不超过80%

6 .加入500μl Buffer C520μl MagIso Beads,混匀。静置静置3~5分钟吸附磁珠

7 .转移至磁力架上,静置3~5分钟吸附磁珠。小心吸弃所有溶液。

8. 加入600ul Buffer MW1,涡旋混匀15。转移重悬液到新的离心管中。(可以省略此步)

9. 转移至磁力架上,静置2分钟吸附磁珠。小心吸弃所有溶液。

10.加入700ul 75%乙醇,涡旋混匀15

11.转移至磁力架上,静置2分钟吸附磁珠。小心吸弃所有溶液。

12.重复第10-11步一次。

13.空气干燥7~10分钟。

14.50~100µl 预热至55oC10mM TE或灭菌水等缓冲液,涡旋打散磁珠。静置3~5分钟,其间轻轻振荡1~2次加速DNA溶解。

15.转移至磁力架上,静置3分钟。转移DNA溶液至新的1.5ml离心管中。

PCR扩增首先需要进行引物的设计。引物设计需依不同的研究目标而定,如果是对研究区进行全面的生物多样性评价,则要选择通用性引物,以保证此引物扩增到的物种序列最全;如果是对特定物种进行监测评估,则需根据目标物种特点设计特异性引物。之后进行PCR扩增,扩增后产物经琼脂糖凝胶电泳检测,若检测结果符合要求,即可进行上机测序。
测序得到的原始序列需经过低质量过滤、序列拼接、去除嵌合体等一系列质控过程,得到的高质量有效序列将按照一定的序列相似性进行OTU聚类(OTU相当于传统生物监测中的“种”),在每个OTU中选取代表序列(通常为最长序列)与相应的参考数据库比对进行物种的注释分析,不同数据库的鉴定范围通常不同(表 1),需根据目标物种选择合适的数据库。以OTU聚类和物种注释结果为基础,可得到区域内的物种组成与分布、群落间结构差异等信息,还可进一步挖掘物种之间的进化关系,探究不同环境因子对物种群落结构的影响等。

4. eDNA技术在水生态研究中的应用

4.1 生物多样性监测4.1.1 物种的识别与监测

生物多样性是衡量某一区域物种丰富程度的重要指标,是环境生态学领域的重要基础性工作,生物多样性监测的难点在于快速准确地识别物种,eDNA技术因可以解决这一问题,而在浮游动物、藻类、鱼类等生物类群的监测中得到了应用。

4.1.2 濒危物种和入侵物种监测

濒危物种保护和外来入侵物种防治是维持生态系统平衡、保护全球生物多样性的重要举措。一般情况下,入侵物种早期阶段和濒危物种的物种数量低,利用传统的形态学监测方法难以及时发现,这增加了珍稀物种灭绝和外来物种大规模繁殖的风险,影响到生态系统结构的稳定性。

4.2 生物量评估

已有研究表明,某一物种释放的eDNA浓度和其生物量呈正相关关系[40],此结论为生物资源的综合评估提供了一个新的思路。李苗等[42-43]在建立优化中国对虾(Fenneropenaeus chinensis)eDNA操作流程的基础上,进一步对eDNA在水体中的存留时间进行了研究,这些研究对中国对虾进行定量的生物量评估至关重要。秦传新等[44]分别综述了实验室可控环境和野外环境条件下利用eDNA技术进行生物量评估的研究进展,并提出要更多地关注影响eDNA释放、迁移、降解的因素,进而为生物量评估提供重要的依据。尽管目前已有众多针对鱼类、两栖动物等物种生物量估算的研究,但由于不同物种释放eDNA的浓度和速度不尽相同,想要实现跨类群的生物量评估还需要eDNA技术更深入的发展。

4.3 生物食性分析

以往的食性分析多基于形态学鉴定、同位素追踪等方法[45],对濒危性、夜行性以及生活习性难以掌握的生物测定难度较大。近年来eDNA技术被广泛应用于动物食性的分析,其最大的优势在于能进行快速精准的测定,有利于精确解析动物食物网的关系和生态系统的功能。周天成等[46]利用基因测序技术分析了一种海洋贝类——塔形马蹄螺(Tectus pyramis)的食物组成并推测其属于沉积物碎屑食性生物,测序结果共获得41个OTU,分属11个门类,其中有孔虫、真菌、后生动物是其消化道中存在的重要类群。除此之外,eDNA技术还被用于多种海洋生物的食性研究,如刺参、龙虾、方星格虫等[47]。

食性分析是生态学研究的重点,也是了解水生生物与环境关系及捕食者与被捕者关系的基础,是对已有食物链研究的重要补充[48],对研究区内食物网结构的重建和生态调控具有重要意义。但世界上绝大多数生物的食性分析还处于较为粗略的定性描述阶段,eDNA技术将会成为人类更全面明确生物食性、研究食物链/网结构的有利工具

4.4 生态风险评估

生态风险评估是生态毒理学研究中的重要且基础内容,传统生态毒理学方法强调对化学物质暴露过程的评估,忽视了对群落结构及生态系统基本功能的影响,评估结果具有一定的应用局限性。ZHANG[49]认为eDNA技术开拓了生态毒理学研究的新时代,该技术既可解决当前生态风险评估存在的问题,又可扩展未来生态毒理学研究的领域和方法。YANG等[50]、LI等[51]利用eDNA技术监测了水体中的原核生物、真核生物等生物群落结构,评估了其与pH、总氮、总磷等环境因子的关系;XIE等[52]利用eDNA技术评估了漏油对沿海沉积物中细菌、原生动物、后生动物群落的影响;YANG等[53]探究了铜的不同浓度对湿地沉积物中原核生物和真核生物多样性、群落结构以及生物间关系的影响。这些研究推动着eDNA技术在生态系统监测、污染诊断和生态修复等方面更深入的应用。

4.5 生物流行病的预测与预防

疾病生态学是用生态学观点研究环境、宿主和病原体之间关系及其发展规律的新学科,其能明确疾病进化和生态之间的相互作用,预测疾病爆发的方式和地点,指导相关部门的管理决策,有效预防生物流行病的传播。当前,eDNA技术已用于研究水体中的寄生虫疾病[54]。CARRARO等[55-56]、GOMES等[57]通过研究证实了eDNA技术用于预测预防水体寄生虫爆发的潜力。其中CARRARO等[55]以瑞士Wigger分水岭为研究区,以对本地鲑鱼物种有极大影响的增生性疾病(Proliferative kidney disease,PKD)为研究对象,绘制了其病原体F. sultane的DNA浓度分布图,并建立了研究水传播疾病的流行病学和疾病动力学模型;同时利用eDNA技术对整个河流上游网络中引发鲑鱼疾病的固着无脊椎动物F. sultane及其寄生虫T. bryosalmonae的分布和丰度进行了估计,通过这两种生物的生物量变化来预测PKD在研究区内的传染状况[56]。这项研究开启了利用eDNA技术估计目标物种在研究区内分布情况及有效预测预防流行病传播的新模式,而传统的调查方法迄今还无法做到这一点。

5. eDNA技术应用的局限性与展望

在水生态监测研究中,传统的形态学生物监测方法受耗时长、难度大、成本高等因素的限制,无法实现对水生生物的精准监测和识别。eDNA技术目前虽然也存在着流程不规范统一、数据库不完善等问题,但其具有的省时高效、灵敏度高、环境友好等优势,正推动着该技术成为生物多样性监测和评估的一个强有力工具。因此,eDNA技术和传统监测方法的互相补充才能为全球大规模、高效率的生物监测提供技术支撑。

eDNA技术是分子生态学发展的重要产物,它将极大地提升人类从生态系统中获取数据的能力,未来关于eDNA的进一步发展将涉及技术和应用两个层面。技术方面,在解决技术流程、监测精度、水生生物种数据库等问题的同时,应加强新兴测序技术及平台的研发,将基因测序结果和监督式机器学习进行有效结合,实现水生态监测的智能化,不断提高监测效率,使更大批量的测序成为可能,还应将eDNA技术引入水生生物的食物网/链研究中,丰富eDNA研究的技术体系。应用方面,一是在稳步推进eDNA技术应用于水域生物多样性与水生态监测等常规研究的同时,还应拓展eDNA技术在水生态系统的研究领域,加强该技术在水域食物链/网重构、流域营养盐控制、流域生态调控与管理中的应用;二是要积极开展试点性研究,尝试将eDNA技术引入国家水环境与水生态监测体系,编制并完善与eDNA技术应用及实施相关技术的指南、导则与方法,进而实现eDNA技术在水生态环境监测领域更广泛的应用。

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