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TMB显色原理及常见问题解析

TMB显色原理及常见问题解析 捷倍斯生物
2025-02-20
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导读:TMB 是一种常用的辣根过氧化物酶(HRP)底物。在酶联免疫吸附测定(ELISA)等实验中,当抗原或抗体与酶(HRP)结合形成酶结合物,加入 TMB 底物后,在 HRP 的催化作用下,TMB 被氧化,

TMB显色实验原理

TMB 是一种常用的辣根过氧化物酶(HRP)底物。在酶联免疫吸附测定(ELISA)等实验中,当抗原或抗体与酶(HRP)结合形成酶结合物,加入 TMB 底物后,在 HRP 的催化作用下,TMB 被氧化,发生显色反应。TMB 本身无色,被 HRP 催化氧化后生成蓝色产物,加入硫酸等终止液后,蓝色会转变为黄色。通过酶标仪在特定波长(如 450nm 或 630nm)下测定吸光度值,吸光度值的大小与酶结合物的量(即抗原或抗体的量)成正比,从而可以对样品中的目标物质进行定性或定量分析。

图源:科学直说

TMB显色实验步骤(以常见Elisa为例)

图源:网络

1. 包被

  • 将抗原或抗体稀释到适当浓度,一般用包被缓冲液(如碳酸盐缓冲液,pH 9.6)进行稀释。

  • 每孔加入一定体积(通常为 100 μL)的抗原或抗体溶液到酶标板中,将酶标板密封后,置于 4℃冰箱过夜或 37℃孵育 2 - 3 小时,使抗原或抗体吸附在酶标板的孔壁上。

2. 封闭

  • 弃去孔内液体,用洗涤缓冲液(如含吐温 - 20 的磷酸盐缓冲液,PBST)洗涤酶标板 3 - 5 次,每次浸泡 3 - 5 分钟,然后拍干。

  • 每孔加入封闭液(如 5% 脱脂牛奶或 1% BSA 溶液),一般每孔 200 μL,37℃孵育 1 - 2 小时,以封闭酶标板上未被抗原或抗体占据的位点,减少非特异性吸附。

3. 加样

  • 弃去封闭液,用洗涤缓冲液洗涤酶标板 3 - 5 次,每次浸泡 3 - 5 分钟,然后拍干。

  • 将待检测样品用样本稀释液进行适当稀释后,每孔加入 100 μL,同时设置阳性对照、阴性对照和空白对照,37℃孵育 1 - 2 小时,使样品中的目标抗原或抗体与包被在酶标板上的抗体或抗原结合。

4. 加酶结合物

  • 弃去孔内液体,用洗涤缓冲液洗涤酶标板 3 - 5 次,每次浸泡 3 - 5 分钟,然后拍干。

  • 每孔加入 100 μL 适当稀释的酶(辣根过氧化物酶,HRP)标记的抗体或抗原,37℃孵育 1 - 2 小时,使酶结合物与结合在酶标板上的目标抗原或抗体结合。

5. 加 TMB 底物

  • 弃去孔内液体,用洗涤缓冲液洗涤酶标板 3 - 5 次,每次浸泡 3 - 5 分钟,然后拍干。

  • 每孔加入 100 μL TMB 底物溶液,室温避光反应 15 - 30 分钟,在 HRP 的催化作用下,TMB 被氧化,溶液逐渐变为蓝色。

6. 终止反应

  • 每孔加入 50 μL 终止液(一般为 2M 硫酸),此时溶液由蓝色变为黄色。注意硫酸具有强腐蚀性

捷倍斯生物公司的 GBCBIO® TMB显色终止液(G1108) Stop Solution For TMB Substrate 采用低腐蚀性的有机酸替代传统使用2M硫酸作为TMB显色的终止液,硫酸有强腐蚀性、且是管控危险化学品难以购买得到,而本产品为低腐蚀性的有机酸可以有效避免硫酸的强腐蚀性可能对人体造成的伤害。

推荐使用的产品
货号 产品名称
G1108 TMB显色终止液(450nm, 不含硫酸)  Stop Solution For TMB Substrate(450nm)
G1118 TMB显色终止液(650nm, 无腐蚀性)Stop Solution For TMB Substrate(650nm)
G4308 TMB Substrate For Blotting TMB显色试剂盒(组化或膜HRP显色用)
G4308 TMB Substrate For Elisa  TMB显色试剂盒(ELISA HRP显色用)
0759 TMB 四甲基联苯胺 

产品介绍:

https://www.gbcbio.cn/Product/G1108.html

https://www.gbcbio.cn/Product/G1118-100ml.html

https://www.gbcbio.cn/Product/G3418.html

https://www.gbcbio.cn/Product/G4308.html

https://www.gbcbio.cn/Product/0759.html

7. 测定吸光度

  • 用酶标仪在特定波长(通常为 450nm)下测定各孔的吸光度值。

TMB显色注意事项

试剂方面

  • 试剂保存:TMB 底物应避光保存于 2 - 8℃,避免反复冻融,使用前需恢复至室温。其他试剂如包被缓冲液、封闭液、洗涤缓冲液等也应按照规定条件保存,确保其有效性。

  • 试剂配制:所有试剂应严格按照说明书进行配制,使用高质量的蒸馏水或去离子水,确保试剂的浓度和 pH 值准确。

  • 试剂有效期:使用前检查试剂的有效期,过期试剂可能会影响实验结果。


操作方面

  • 加样准确性:加样时应使用校准过的移液器,确保加样量准确,避免产生气泡,加样过程中要避免交叉污染。

  • 洗涤充分性:洗涤步骤是减少非特异性信号的关键,要确保洗涤次数和时间足够,每次洗涤后要彻底拍干酶标板,避免残留的洗涤液影响后续反应。

  • 孵育条件:孵育温度和时间应严格按照实验要求进行控制,孵育过程中要保持酶标板的密封性,避免水分蒸发和温度不均匀。

  • 避光操作:TMB 底物对光敏感,在加底物和反应过程中应避免光照,可将酶标板放在暗盒或用铝箔纸包裹。


仪器方面

  • 酶标仪校准:使用前要对酶标仪进行校准,确保波长准确性和吸光度测量的精度。

  • 仪器清洁:定期清洁酶标仪的比色池,避免残留物质影响测量结果。


TMB显色常见问题

背景颜色过深:可能是由于洗板不充分,残留的酶结合物与底物反应产生颜色;也可能是封闭不彻底,导致非特异性吸附的蛋白质与酶结合物结合;此外,底物孵育时间过长、TMB 底物浓度过高或者酶结合物浓度过高也会造成背景颜色过深。

显色过浅或无显色:可能是样品中目标物质含量低,与酶结合物结合的量少;也可能是酶结合物失活,如保存不当、使用过期的酶结合物等;另外,孵育温度过低、时间过短,或者底物变质、加样量不准确等都可能导致显色过浅或无显色。

孔间差异大:可能是加样不准确,如加样量不一致、加样时产生气泡等;也可能是洗板不均匀,导致各孔之间残留的酶结合物量不同;此外,孵育时各孔的温度、湿度不一致,或者酶标板在孵育过程中受到震动等也会引起孔间差异。

显色不稳定:可能是底物的质量问题,如底物保存不当、过期等;也可能是实验环境温度、湿度变化较大,影响了酶促反应的稳定性;另外,实验操作过程中如移液速度、力度不均匀等也可能导致显色不稳定。

还没有开始显色反应,TMB就是浅蓝色了:TMB的保存要求低温避光,现用现配,环境中就有氧化物存在,如果TMB时间太长了,反复开封,不避光,温度高等,都可能发生氧化,变成有一点蓝。或者在反复使用的时候,试剂被污染,比如双氧水,漂白剂,实验室清洁剂,或者任何含有过氧化物酶的蛋白或者物体,都是有可能催化它的氧化的。过氧化物酶在生物体中广泛存在,血液、手汗等等。

TMB显色后,蓝色迅速消失:通常为显色系统内有还原物导致的,比如水、显色buffer、或试剂组分里面的其他物质。商业TMB里面为了在效期内保持无色,通常也加稳定剂,这个稳定剂也有可能是还原剂。比如常用的硫代硫酸盐。

TMB显色颜色和实验要求不一致:正常TMB+催化剂+双氧水是蓝色,但是变成了褐色或者棕色,通常是因为过渡氧化造成的,同时在建立显色系统的时候,要对pH、缓冲液浓度、HRP浓度、双氧水浓度等都要合理范围内。变成黑色和绿色。通常因为底物浓度太高,导致颜色过于集中,会显示深蓝色,看起来像是黑色。当pH发生变化的时候,颜色也会变化,加酸颜色变浅,从蓝色到绿色到黄色。

TMB 显色实验的原理基于酶催化底物显色,而在实验过程中可能会遇到背景颜色过深、显色过浅或无显色、孔间差异大、显色不稳定等常见问题,需要通过优化实验条件、规范实验操作等方法来解决。

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