TMB显色实验原理
TMB 是一种常用的辣根过氧化物酶(HRP)底物。在酶联免疫吸附测定(ELISA)等实验中,当抗原或抗体与酶(HRP)结合形成酶结合物,加入 TMB 底物后,在 HRP 的催化作用下,TMB 被氧化,发生显色反应。TMB 本身无色,被 HRP 催化氧化后生成蓝色产物,加入硫酸等终止液后,蓝色会转变为黄色。通过酶标仪在特定波长(如 450nm 或 630nm)下测定吸光度值,吸光度值的大小与酶结合物的量(即抗原或抗体的量)成正比,从而可以对样品中的目标物质进行定性或定量分析。
图源:科学直说
TMB显色实验步骤(以常见Elisa为例)
1. 包被
将抗原或抗体稀释到适当浓度,一般用包被缓冲液(如碳酸盐缓冲液,pH 9.6)进行稀释。
每孔加入一定体积(通常为 100 μL)的抗原或抗体溶液到酶标板中,将酶标板密封后,置于 4℃冰箱过夜或 37℃孵育 2 - 3 小时,使抗原或抗体吸附在酶标板的孔壁上。
2. 封闭
弃去孔内液体,用洗涤缓冲液(如含吐温 - 20 的磷酸盐缓冲液,PBST)洗涤酶标板 3 - 5 次,每次浸泡 3 - 5 分钟,然后拍干。
每孔加入封闭液(如 5% 脱脂牛奶或 1% BSA 溶液),一般每孔 200 μL,37℃孵育 1 - 2 小时,以封闭酶标板上未被抗原或抗体占据的位点,减少非特异性吸附。
3. 加样
弃去封闭液,用洗涤缓冲液洗涤酶标板 3 - 5 次,每次浸泡 3 - 5 分钟,然后拍干。
将待检测样品用样本稀释液进行适当稀释后,每孔加入 100 μL,同时设置阳性对照、阴性对照和空白对照,37℃孵育 1 - 2 小时,使样品中的目标抗原或抗体与包被在酶标板上的抗体或抗原结合。
4. 加酶结合物
弃去孔内液体,用洗涤缓冲液洗涤酶标板 3 - 5 次,每次浸泡 3 - 5 分钟,然后拍干。
每孔加入 100 μL 适当稀释的酶(辣根过氧化物酶,HRP)标记的抗体或抗原,37℃孵育 1 - 2 小时,使酶结合物与结合在酶标板上的目标抗原或抗体结合。
5. 加 TMB 底物
弃去孔内液体,用洗涤缓冲液洗涤酶标板 3 - 5 次,每次浸泡 3 - 5 分钟,然后拍干。
每孔加入 100 μL TMB 底物溶液,室温避光反应 15 - 30 分钟,在 HRP 的催化作用下,TMB 被氧化,溶液逐渐变为蓝色。
6. 终止反应
每孔加入 50 μL 终止液(一般为 2M 硫酸),此时溶液由蓝色变为黄色。注意硫酸具有强腐蚀性
| 货号 | 产品名称 |
|---|---|
| G1108 | TMB显色终止液(450nm, 不含硫酸) Stop Solution For TMB Substrate(450nm) |
| G1118 | TMB显色终止液(650nm, 无腐蚀性)Stop Solution For TMB Substrate(650nm) |
| G4308 | TMB Substrate For Blotting TMB显色试剂盒(组化或膜HRP显色用) |
| G4308 | TMB Substrate For Elisa TMB显色试剂盒(ELISA HRP显色用) |
| 0759 | TMB 四甲基联苯胺 |
产品介绍:
https://www.gbcbio.cn/Product/G1108.html
https://www.gbcbio.cn/Product/G1118-100ml.html
https://www.gbcbio.cn/Product/G4308.html
7. 测定吸光度
-
用酶标仪在特定波长(通常为 450nm)下测定各孔的吸光度值。
TMB显色注意事项
试剂方面
试剂保存:TMB 底物应避光保存于 2 - 8℃,避免反复冻融,使用前需恢复至室温。其他试剂如包被缓冲液、封闭液、洗涤缓冲液等也应按照规定条件保存,确保其有效性。
试剂配制:所有试剂应严格按照说明书进行配制,使用高质量的蒸馏水或去离子水,确保试剂的浓度和 pH 值准确。
试剂有效期:使用前检查试剂的有效期,过期试剂可能会影响实验结果。
操作方面
加样准确性:加样时应使用校准过的移液器,确保加样量准确,避免产生气泡,加样过程中要避免交叉污染。
洗涤充分性:洗涤步骤是减少非特异性信号的关键,要确保洗涤次数和时间足够,每次洗涤后要彻底拍干酶标板,避免残留的洗涤液影响后续反应。
孵育条件:孵育温度和时间应严格按照实验要求进行控制,孵育过程中要保持酶标板的密封性,避免水分蒸发和温度不均匀。
避光操作:TMB 底物对光敏感,在加底物和反应过程中应避免光照,可将酶标板放在暗盒或用铝箔纸包裹。
仪器方面
酶标仪校准:使用前要对酶标仪进行校准,确保波长准确性和吸光度测量的精度。
仪器清洁:定期清洁酶标仪的比色池,避免残留物质影响测量结果。
背景颜色过深:可能是由于洗板不充分,残留的酶结合物与底物反应产生颜色;也可能是封闭不彻底,导致非特异性吸附的蛋白质与酶结合物结合;此外,底物孵育时间过长、TMB 底物浓度过高或者酶结合物浓度过高也会造成背景颜色过深。
显色过浅或无显色:可能是样品中目标物质含量低,与酶结合物结合的量少;也可能是酶结合物失活,如保存不当、使用过期的酶结合物等;另外,孵育温度过低、时间过短,或者底物变质、加样量不准确等都可能导致显色过浅或无显色。
孔间差异大:可能是加样不准确,如加样量不一致、加样时产生气泡等;也可能是洗板不均匀,导致各孔之间残留的酶结合物量不同;此外,孵育时各孔的温度、湿度不一致,或者酶标板在孵育过程中受到震动等也会引起孔间差异。
显色不稳定:可能是底物的质量问题,如底物保存不当、过期等;也可能是实验环境温度、湿度变化较大,影响了酶促反应的稳定性;另外,实验操作过程中如移液速度、力度不均匀等也可能导致显色不稳定。
还没有开始显色反应,TMB就是浅蓝色了:TMB的保存要求低温避光,现用现配,环境中就有氧化物存在,如果TMB时间太长了,反复开封,不避光,温度高等,都可能发生氧化,变成有一点蓝。或者在反复使用的时候,试剂被污染,比如双氧水,漂白剂,实验室清洁剂,或者任何含有过氧化物酶的蛋白或者物体,都是有可能催化它的氧化的。过氧化物酶在生物体中广泛存在,血液、手汗等等。
TMB显色后,蓝色迅速消失:通常为显色系统内有还原物导致的,比如水、显色buffer、或试剂组分里面的其他物质。商业TMB里面为了在效期内保持无色,通常也加稳定剂,这个稳定剂也有可能是还原剂。比如常用的硫代硫酸盐。
TMB显色颜色和实验要求不一致:正常TMB+催化剂+双氧水是蓝色,但是变成了褐色或者棕色,通常是因为过渡氧化造成的,同时在建立显色系统的时候,要对pH、缓冲液浓度、HRP浓度、双氧水浓度等都要合理范围内。变成黑色和绿色。通常因为底物浓度太高,导致颜色过于集中,会显示深蓝色,看起来像是黑色。当pH发生变化的时候,颜色也会变化,加酸颜色变浅,从蓝色到绿色到黄色。
TMB 显色实验的原理基于酶催化底物显色,而在实验过程中可能会遇到背景颜色过深、显色过浅或无显色、孔间差异大、显色不稳定等常见问题,需要通过优化实验条件、规范实验操作等方法来解决。
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