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膜蛋白研究必备:分类、特性与提取全攻略

膜蛋白研究必备:分类、特性与提取全攻略 捷倍斯生物
2025-11-11
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导读:生物膜的特定功能主要是由蛋白质完成的;膜蛋白约占膜的40%~50%,有50余种膜蛋白;在不同细胞中膜蛋白的种类及含量有很大差异。有的含量不到25%,有的达到75%;一般来说,功能越复杂的膜,其上的蛋白
一. 细胞膜简介
膜蛋白指细胞膜上的蛋白,首先细胞膜是一种特殊生物膜,不仅保证了细胞内各种生理反应有序进行,也实现了物质、能量和信号的正常传导,其大部分功能依靠细胞膜上的膜蛋白完成。膜蛋白提取的难点较多,主要原因是膜蛋白在生物体内的表达水平较低,具有极强的疏水特性,并且通常在实验条件下难以维持正确构象。

SARS-COV-2病毒欺骗细胞,通过细胞膜(图源:百度百科

二. 细胞膜的结构

生物膜的特定功能主要是由蛋白质完成的;膜蛋白约占膜的40%~50%,有50余种膜蛋白;在不同细胞中膜蛋白的种类及含量有很大差异。有的含量不到25%,有的达到75%;一般来说,功能越复杂的膜,其上的蛋白质含量越多。

细胞膜的结构示意图(图源:Encyclopaedia Britannica )

三 什么是膜蛋白?

膜蛋白是一类广泛存在于生物体细胞膜上的蛋白质分子。它们在维持细胞结构完整性、调控物质运输和信号传导等方面起着重要作用。根据蛋白分离的难易及在膜中分布的位置,膜蛋白基本可分为三大类:外在膜蛋白或称外周膜蛋白、内在膜蛋白或称整合膜蛋白和脂锚定蛋白。膜蛋白包括糖蛋白,载体蛋白和酶等。

通常在膜蛋白外会连接着一些糖类,这些糖相当于会通过糖本身分子结构变化将信号传到细胞内。研究膜蛋白结构的技术包括X射线衍射等,常用于重组膜蛋白的表达系统有真核表达系统。

四 膜蛋白有哪些种类?

目前存在不同类型的膜蛋白,主要有以下几种类型:

通道蛋白:形成通道,允许特定离子或分子通过细胞膜。例如,离子通道蛋白可以控制细胞内外离子的平衡,如钠、钾、钙等。

受体蛋白:与信号分子结合,并触发细胞内信号转导通路的活化或抑制。例如,受体酪氨酸激酶可以感知外界信号,并调节细胞增殖和分化。

运输蛋白:在细胞膜上扮演运输分子或离子的角色。例如,载脂蛋白可以通过细胞膜将脂质从一个细胞运输到另一个细胞。

酶蛋白:在细胞膜上具有催化化学反应的功能。例如,膜上的ATP酶能够将ADP和无机磷酸转化为ATP。

结构蛋白:提供细胞膜的结构支持。例如,整合素是一种重要的细胞外基质受体,能够连接细胞内和细胞外的分子。

识别蛋白:用于细胞识别和黏附。例如,血型抗原是一种存在于红细胞表面的识别蛋白,用于区分不同的血型。

五 不同类型膜蛋白有什么特点?

膜蛋白有多种形状和大小,执行多种任务,但它们总是依赖于一些关键特征。 膜蛋白的一些区别特征如下。

跨膜域: 跨膜结构域是延伸到脂质双层全长的蛋白质片段。 疏水性氨基酸残基是这些结构域的共同特征,它们介导与膜磷脂疏水性尾部的相互作用。

疏水和亲水区域: 膜蛋白包含疏水和亲水结构域,使它们能够与脂质双层和两侧的水环境进行交流。

选择性:膜蛋白的一个共同特征是它们能够调节某些分子或离子的通过。 通常是蛋白质的独特结构和电荷决定了它的选择性。

受体位点: 当膜蛋白上的受体区域与各自的目标分子或离子结合时,这些区域就会被激活。 大多数时候, 分子 或由受体检测到的离子在受体上具有与该位点结构或化学相容的结合位点。

构象变化: 当膜蛋白结合特定分子或离子时,它通常会发生构象变化,从而引发生物反应或允许蛋白质将结合的分子转运穿过膜。

锚固:多种机制,包括与其他蛋白质的相互作用和与膜中脂质分子的结合,可用于将膜蛋白锚定到细胞膜。

糖基化:碳水化合物链通过称为糖基化的过程与几种膜蛋白结合。 这种改变可以作为防止蛋白水解的保护措施,并作为细胞中下游蛋白质的信号。

跨膜结构域、疏水和亲水区域、选择性、受体位点、构象变化、锚定和糖基化都是膜蛋白的特性,对它们在细胞膜中的功能至关重要。 由于这些特性,膜中的蛋白质能够运输分子、发送信号、提供结构支持和催化反应。

六 膜蛋白的提取方法有哪些?

1. 先分离膜,然后提取
 如选用冷热交替法、反复冻融法、超声破碎法、玻璃匀浆法、自溶法和酶处理法使得细胞破碎,然后通过剃度离心得到含有膜蛋白的粗组分。
(例如:michael11 液氮研磨组织→加入匀浆缓冲液及蛋白酶抑制剂→差速离心→蔗糖密度梯度离心→收集 37% 与 41% 间的成分,即为质膜部分→裂解即可收集膜蛋白)。
2. 用特殊的去污剂选择性分离
 采用去垢剂将疏水蛋白从其膜结构中溶解下来,然后将蛋白质稳定。去垢剂的选择通常是依据对所需要蛋白质的提取效率来确定,但在某些情况下,还要考虑到以后的纯化步骤。虽然许多膜蛋白必须在去垢剂存在的情况下进行纯化,但最终仍可能需要除去去垢剂。在设计膜蛋白溶解方案时,必须考虑某一去垢剂的特殊性质。如 tritonX-100 在 280 nm 处有吸收,如果某蛋白质的测试与 280 nm 处的吸收有关,就应避免使用这类去垢剂。将膜制剂与胞质蛋白及细胞核分离后,再进一步从细胞膜制剂中将所需的膜蛋白增溶下来。这种做法的好处是可以用强烈的去垢剂提取细胞骨架的相关蛋白,而无需考虑胞质蛋白、细胞核成分或染色质成分的混入。使用这种方法所获得的膜蛋白,无论在种类上还是数量上,都比酸溶解法所得到的蛋白(< 5000 Da)要多。
一般提取的膜蛋白量往往只占膜蛋白总量的不足 0.1%,所以充分的膜蛋白的提取,无疑对于研究膜蛋白的结构和功能都是非常重要的。第二种方法简单,可靠,但有时含有其他蛋白。一般的都是利用 4 度时所有的蛋白质原则上都溶于 TritonX-114 水溶液,在温度超过 20 度时,此溶液分为水相和去污相;此时亲水性蛋白溶于水相,疏水的膜蛋白溶于去污剂相中。利用此性质可提取膜蛋白。
3. 膜蛋白色谱 (CMP)
CMP+ 分离强疏水性蛋白、多肽混合物的层析系统,一般有去垢剂(如 SDS)溶解膜蛋白后形成 SDS-融膜蛋白,并由羟基磷灰石为固定相的柱子分离纯化。羟基磷灰石柱具有阴离子磷酸基团(P-端),又具有阳离子钙(C-端),与固定相结合主要决定于膜蛋白的大小、SDS 结合量有关。利用原子散射法研究 cAMP 的分离机制发现,样品与 SDS 结合后在离子交换柱上存在 SDS 分子、带电荷氨基酸与固定相中带电离子间的交换,从而达到分级分离的目的。
4. 顺序抽提法
根据细胞蛋白溶解性的差异,用具有不同溶解能力的蛋白溶解液进行抽提的方法。用 Tris 碱溶液裂解细胞提取高溶解性蛋白;把未溶解的 pellet 用标准液溶解提取高疏水性蛋白;最后用含复合表面活性剂的蛋白溶解液,最后可以再次抽提前两次抽提后不能溶解的膜蛋白。
5. 试剂盒法提取膜蛋白
高渗的蛋白裂解液让细胞溶胀破裂后,超高速离心。
捷倍斯生物生产的Membrane Protein Extraction Kit 膜蛋白抽提试剂盒(GBCBIO-4420) 采用独特的组分,提取细胞及组织中的膜蛋白。特殊的溶液系统,在裂解细胞的同时,还可以选择性低地分离提取细胞膜蛋白与细胞器膜蛋白。提取方法简单,可靠,快速,获得的膜蛋白纯度高,可用于SDS-PAGE电泳、Western Blot、免疫沉淀等后续实验,每次可以提取107个培养细胞或200mg动物组织。
• 多用途—适用于新鲜的哺乳动物细胞或组织样品,几乎没有交叉污染。
• 方便快捷—非变性,有活性的蛋白质可在90分钟内迅速提取完成。
• 兼容性好—提取的蛋白适用于多种下游实验,如Western Blot、免疫沉淀等

膜蛋白抽提的操作步骤GBCBIO-G4420试剂盒为例

1.准备细胞或组织样品:

A. 细胞

贴壁细胞:培养约2000-5000万细胞,用PBS洗一遍,用细胞刮子刮下细胞或用含有EDTA但

不含胰酶的细胞消化液处理细胞使细胞不再贴壁很紧,并用移液器吹打下细胞。离心收集细

胞,吸除上清,留下细胞沉淀备用。尽量避免用胰酶消化细胞,以免胰酶降解需抽提的目的

膜蛋白。

悬浮细胞:培养约2000-5000万细胞,直接离心收集细胞,吸除上清,留下细胞沉淀备用。

B. 对于组织:取约100毫克组织,用剪刀尽量小心剪切成细小的组织碎片

2.样品洗涤:用适量的已稀释的洗涤液洗涤样品三次,每次3000rpm离心2min。

3.样品裂解:在上述细胞或组织中加入1ml蛋白提取液(使用前加入PMSF,终浓度为1mM,与2.5μl DTT),4℃下用玻璃匀浆器手动上下手动匀浆30-50次。或者用超声波破碎细胞,每次30s,3-4次,每次间隔1分钟,置于冰上冷却。细胞破碎后应经镜检,细胞破碎率不小于70%,无明显的组织块。

镜检:通常可以在匀浆30次后取约2-3微升细胞或组织匀浆液滴在盖玻片上并在显微镜下观察,

如见细胞核周晕环(A shiny ring around the nuclei)或完整的细胞形态,说明细胞仍完整。如果有70-80%的细胞均无核周晕环和完整细胞形态,说明细胞已经充分破碎,则进行下一步实验。否则,重新匀浆10-30次直到细胞至少70%已经破碎。同时记录对于该细胞的匀浆次数,通常在后续实验时不必再摸索匀浆次数。另外需注意特定的匀浆次数和匀浆器也有关,需同时注意记录使用的是哪一个匀浆器。

注:如果没有适当的玻璃匀浆器,对于培养的细胞也可以采用冻融法来破碎细胞。把步骤2

中的样品在液氮和室温依次反复冻融两次,然后取少量样品在显微镜下检测细胞破碎的程度。如果细胞破碎的程度不足70%,可增加冻融次数,直到细胞破碎的程度大于70%。

4. 转移裂解液到预冷的1.5ml离心管中,冰上放置10分钟,期间剧烈涡旋2-3次,于4℃,

16000rpm离心10min,弃沉淀,上清移至新的离心管中。

5.含上清的离心管 37℃水浴10min,室温,13000rpm离心5分钟,样品分成上层与下层(含膜蛋白)。建议使用进口的透明度高的离心管,方便观察分层,在分层交界处有一折光线,需仔细观察才可以见到。

6. 取下层,加入500ul冰冷灭菌水混匀,4℃放置5min后,置于37℃水浴10min。

7. 室温,13000rpm离心5分钟,样品分成上层与下层(含膜蛋白)。

8. 重复第6,7步操作一次,最终取下层即为膜蛋白提取物。BCA法测定蛋白浓度。

9. 每100ul膜蛋白提取物加入900ul预冷的丙酮,混匀冰浴20min,16000rpm离心15min。

10. 弃上清,沉淀真空干燥或敞盖冰浴10min,用含巯基乙醇或DTT适量的loading buffer溶解沉淀。如沉淀难以溶解,可以加入尿素或硫脲等强溶解力试剂。

推荐使用的产品
货号 产品名称
G4420 Membrane Protein Extraction Kit 膜蛋白抽提试剂盒
 G4421 Nuclear and Cytoplasmic Protein Extraction Kit 核蛋白和胞浆蛋白提取试剂盒
G4422
Membrane and Cytosol Protein Extraction Kit 膜蛋白和胞浆蛋白提取试剂盒

 产品介绍:

https://www.gbcbio.cn/Product/G4422-1.html

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