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7种提取质粒方法及原理介绍

7种提取质粒方法及原理介绍 捷倍斯生物
2025-08-15
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导读:质粒提取是分子生物学中常用的技术,其目的是从宿主细胞中分离出质粒DNA。质粒是细菌、酵母和其他一些微生物细胞内的小型、圆形的双链DNA分子,通常携带额外的遗传信息,如耐药性基因等。质粒提取的原理主要基

质粒是在细菌和其他微生物细胞中发现的一种小型、环状DNA 分子。与细菌染色体分开并独立复制;通常只携带少量基因,特别是一些与抗生素耐药性有关的基因;可以在不同的细菌细胞之间传递。

图源:biologydictionary

质粒提取是分子生物学中常用的技术,其目的是从宿主细胞中分离出质粒DNA。质粒提取的原理主要基于DNA与细胞中其他成分(如蛋白质、RNA、多糖等)的化学和物理性质差异来进行分离和纯化。以下介绍几种质粒提取的方法和原理。

图源:吉满生物

碱裂法 (Alkaline Lysis)

这是目前应用最广泛的质粒提取方法,原理简单,成本低,适合小规模实验室使用。

原理:将菌液经过裂解缓冲液处理,其中含有强碱(通常为NaOH)和去垢剂(如SDS),可使细胞破裂并且将蛋白质和染色体DNA变性。后加入酸性缓冲液中和pH值,此时染色体DNA由于部分剪切和变性而沉淀,而小分子的质粒DNA在这种条件下仍能保持超螺旋结构并保持在溶液中。通过离心可以将质粒含有的上清液与沉淀分离。

裂解:用含 SDS(去污剂)和 NaOH(强碱,pH 12.0-12.5)的溶液处理细菌:
    • SDS 破坏细胞膜,释放内容物;
    • NaOH 使蛋白质变性,同时让 DNA 双链解开(变性)。
中和:加入酸性缓冲液(如醋酸钾),使溶液 pH 恢复中性:
    • 质粒 DNA 因分子小、闭环结构,易重新形成双链(复性),溶于溶液;
    • 基因组 DNA 因分子量大、线性结构,难以复性,与变性的蛋白质、细胞碎片等结合成沉淀。
分离:离心去除沉淀,上清液中含质粒 DNA,后续可通过乙醇沉淀或柱纯化获取。

特点:操作简单、成本低,是实验室最常用的方法,适用于小量质粒提取。

二、煮沸裂解法(Boiling Lysis)

原理:通过高温煮沸破坏细菌结构,同时利用质粒与基因组 DNA 的热稳定性差异分离。

处理:细菌悬浮于含溶菌酶(破坏细胞壁)和 Triton X-100(去污剂)的缓冲液中,65℃保温使细胞膜通透性增加。
煮沸:100℃煮沸 1-2 分钟,使蛋白质变性、DNA 变性;此时质粒 DNA 因闭环结构较稳定,部分仍保持双链或易复性。
分离:迅速冰浴冷却,离心去除变性的蛋白质、基因组 DNA(线性,难以复性)和细胞碎片,上清液含质粒 DNA。

特点:快速,但对质粒的完整性有一定影响,且可能残留较多杂质,适用于快速筛选含质粒的菌株。

三、硅基柱吸附法

原理:首先进行碱裂步骤,裂解菌液。然后通过一系列的冲洗和洗脱步骤,利用硅胶或硅胶柱对DNA的亲和力在高盐环境下将DNA吸附,随后在没有盐或低盐的环境下将吸附的DNA洗脱出来进行纯化。

裂解与中和:同碱裂解法,获得含质粒 DNA 的上清液。
吸附:上清液加入结合缓冲液(含高浓度盐,如 GuHCl),使质粒 DNA 与硅胶膜特异性结合(核酸在高盐条件下易吸附于硅胶)。
洗涤:用洗涤缓冲液(含低盐和乙醇)去除膜上残留的蛋白质、盐等杂质。
洗脱:用低盐缓冲液(如 TE 或水)洗脱质粒 DNA(低盐条件下核酸与硅胶膜分离)。
捷倍斯生物(GBCBIO®-P3101 Plasmid Maxi Kit质粒大量试剂盒 是一种简单方便的提取和纯化质粒的产品。能方便、快速纯化出高至500µg高纯度质粒DNA,纯化过程不需用到昂贵的设备。质粒的产量依赖于质粒的拷贝数、E.coli的菌株以及生长条件,一般150-250ml高拷贝LB过夜培养菌液可以纯化出250-500µg质粒DNA。
推荐使用的产品
货号 产品名称
P1105
Plasmid Mini Kit 质粒小量提取试剂盒
P2105
Endo-free Plasmid Mini Kit 无内毒素质粒小量提取试剂盒
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Plasmid Midi Kit 质粒中量提取试剂盒
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Endo-freePlasmid Midi Kit 无内毒素质粒中量提取试剂盒
产品介绍链接:

https://www.gbcbio.cn/Search/index.asp?q=%D6%CA%C1%A3

特点:纯度高、操作标准化,适合大量或小量提取,且可自动化操作(如高通量提取仪),但成本较高(依赖商品化试剂盒)。

六、密度梯度离心法(Cesium Chloride-Ethidium Bromide Gradient Centrifugation)

原理:利用质粒 DNA 与基因组 DNA 在密度梯度中的沉降系数差异分离,是获得高纯度质粒的经典方法。

裂解:细菌用溶菌酶和去污剂裂解,释放 DNA。
密度梯度制备:溶液中加入 CsCl 和溴化乙锭(EB,插入 DNA 双链),形成密度梯度。
离心:超高速离心(40,000 rpm 以上)后,不同构型的 DNA 因密度差异在梯度中形成条带:
    • 闭环质粒 DNA(超螺旋)与 EB 结合少,密度较高,条带位置较靠下;
    • 基因组 DNA(线性)和开环质粒 DNA 与 EB 结合多,密度较低,条带位置较靠上。
分离:用针头穿刺回收质粒 DNA 条带,去除 EB 后纯化。

特点:纯度极高,可用于转染、显微注射等对质粒质量要求高的实验,但操作复杂、耗时,且 EB 具有毒性,目前已逐渐被柱层析法替代。

五、PEG沉淀法

这种方法利用聚乙二醇(PEG)和高浓度盐来沉淀质粒DNA。

原理:经过细胞裂解和清除杂质后,加入PEG和高浓度盐溶液使得质粒DNA沉淀,此时大多数蛋白质和其他杂质则留在溶液中。通过离心分离出质粒DNA的沉淀物,并用适当的缓冲液溶解纯化后的质粒。

三相体系分离法

利用不同相中分子在亲水性和疏水性方面的不同亲合性来分离质粒。

原理:一种三相体系是由水相、有机溶剂以及聚乙二醇组成,每个成分都占一层。DNA分子因亲水性而聚集在水相中,而细胞破碎后产生的蛋白质和其他有机物会与有机相混合。通过适当比例的溶剂和离心操作,可以将不同相分开,取出含有质粒的层进一步纯化。

电子洗脱法 (Electroelution)

这种方法较少见,主要用于实验室里要求高纯度的小规模质粒提取。

原理:首先将含有质粒的样品进行凝胶电泳,然后从凝胶中切割出带有质粒DNA的部分,并使用电场从凝胶中将质粒DNA洗脱出来。

总结

  • 常规实验(如 PCR、酶切)首选碱裂解法柱层析法(试剂盒);
  • 快速筛选可用煮沸裂解法
  • 高纯度需求(如动物细胞转染)可选用密度梯度离心法(或高纯度柱试剂盒)。

不同方法的核心均是利用质粒的闭环小分子量特性,与基因组 DNA、蛋白质等杂质分离,具体选择需结合实验需求和成本。

质粒结构用途介绍可参考:干货收藏:一文读懂质粒




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