正
所谓技多不压身,Western Blot(蛋白免疫印迹,简称WB)作为生命科学研究领域最平常的实验,它蕴含了很多知识,可谓是小实验里有大文章。WB实验历时时间长,每一步都有可能出错,做实验的小伙伴们踩过的坑都可以说不胜枚举。今天我们就来探讨一下实验中可能会出现的问题,帮助大家避免踩坑。
01 蛋白提取
02 蛋白电泳
蛋白质分子量范围(KD) |
凝胶浓度(%) |
<10 |
15 |
10-30 |
12 |
30-100 |
10 |
100-500 |
8 |
>500 |
6 |
采用SDS-PAGE电泳,每孔上样等体积总蛋白,上样时,先加marker,如有空置的加样孔,须加等体积的1×loading buffer,以防相邻泳道样品的扩散。开始电压为80V,使样品跑得慢一些,充分浓缩,到达分离胶后调为120V,电泳至溴酚蓝要跑出即可终止电泳。关于电泳液,建议新鲜配制,也可先配10x的,然后现用现稀释。
Tips:蛋白电泳
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03 蛋白转膜
膜的选择
1
现在用的最多的是PVDF膜,用之前需注意:①先在纯甲醇中浸湿膜15s,保证PVDF膜充分活化;②将膜放入转膜缓冲液中平衡至少5min;
2
NC膜不需要甲醇活化。
膜的孔径
1
根据被转移的蛋白分子量大小,选择不同孔径的印迹膜。因为随着膜孔径的不断减小,膜对低分子量蛋白的结合就越牢固;
2
通常用0.45μm和0.2μm两种规格的印迹膜。大于30KD的蛋白可用0.45μm 的膜,小于30KD的蛋白就要用0.2μm的膜。
小分子蛋白
1
小分子蛋白很容易转过,所以摸索适合自己蛋白的转膜条件很重要,这一步很难说一次就成功,所以刚开始的时候可以在接触胶面的PVDF膜上再放一张PVDF膜,转膜结束后,立春红染色,观察使用的条件是否会转过头;
2
小分子蛋白转膜液中一定不要加SDS,因为SDS会影响转膜效果;
3
小分子蛋白湿转参考100V恒压,或者150-200恒流,40-60min,都可以跑出来结果,同时也可以保证内参的效果很好;
4
小分子蛋白转膜液甲醇浓度为20%;
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分子量小于10 kDa的多肽或蛋白,建议使用Tricine-SDS-PAGE电泳和转膜系统。
大分子蛋白
1
转膜时间要适当延长,220V,300mA,湿转,建议时间在2h30min-3h,因为转膜时间很长,可以预冷转膜缓冲液,同时提前准备好足够的冰袋降温;
2
转膜液中可以加入适量SDS(浓度0.1%),对于大分子量蛋白加入SDS是为了增加了蛋白表面电荷,从而增加转膜效率;
3
大分子蛋白转膜液甲醇浓度为5%。
04 印迹膜封闭
➊ 脱脂奶是最常用的经济配方。
❷ 脱脂奶粉不能与生物素化的抗体一起使用,因为脱脂奶粉含有糖蛋白和生物素;建议使用BSA。
❸ 分析磷酸化蛋白须用BSA。脱脂奶粉含磷酸酶,用磷酸化特异性抗体分析磷酸化蛋白受到影响,因为磷酸酶与膜上的磷酸化蛋白接触可使之去磷酸化;也不适用于碱性磷酸酶(AP)检测系统。
❹ 如果用辣根过氧化物酶(HRP)检测系统,封闭液不应加叠氮钠(NaN3),因为叠氮钠对辣根过氧化物酶(HRP)有灭活作用。
❺ 如果用二抗抗体是碱性磷酸酶(AP)标记的检测系统,可使用酪蛋白封闭,同时须选择TBS缓冲溶液,不可使用PBS缓冲溶液,因为PBS缓冲溶液干扰碱性磷酸酶。
05 一抗二抗孵育
➊ 建议孵育抗体之前一定要仔细看抗体说明书,了解抗体的种属来源和抗体的建议稀释比例。
❷ 选择二抗抗体取决于一抗抗体的动物来源。例如,如果一抗抗体是小鼠来源单克隆抗体,二抗抗体必须是抗小鼠的抗体;如果一抗抗体是兔来源多克隆抗体,二抗抗体必须是抗兔的抗体。
❸ 建议使用商品化的抗体稀释液稀释一抗二抗,不仅能有效减少一抗或二抗的非特异性结合,并有效提升稀释后抗体的稳定保存时间,可重复利用。
06 显影
➊ 建议使用高信号强度、高灵敏度、高稳定性的ECL化学发光试剂。
❷ 显影液务必覆盖整个印迹膜。
❸ 显影液A液和B液吸取过程中必须更换移液器枪头,避免相互污染失效。
❹ ECL工作液需避免强氧化剂如次氯酸钠等对工作液的影响。
❺ 须确保试剂瓶干净,无微生物或其它试剂污染。为了小伙伴们的安全,请穿实验服并佩戴一次性手套。
Western Blot检测试剂盒
货号:AR0040 | 规格:5T/50样品
¥860
看不清具体包含哪些东西,别担心,详见表格——
怀疑他的质量如何,没事,实力说话——
如上图,使用抗Bax兔多克隆抗体(A00183)进行的蛋白质印迹分析。在12%SDS-PAGE凝胶上,以80V(浓缩胶)/120V(分离胶)进行电泳2-3小时。在变性条件下,每个泳道的样品孔中装有50μg样品。
泳道1:大鼠胸腺组织裂解液,
泳道2:小鼠胸腺组织裂解液,
泳道3:HEPA1-6全细胞裂解液,
泳道4:Hela全细胞裂解液,
泳道5:MCF-7全细胞裂解液。
电泳后蛋白转移至PVDF膜上。在室温下,用5%脱脂牛奶/ TBS封闭膜1.5小时。将该膜与抗Bax抗体在4℃孵育(0.5 ug / mL)过夜,然后用TBS-T洗涤3次,每次5分钟,并用羊抗-兔IgG-HRP二抗(1:10000稀释)在室温下孵育1.5小时,然后用TBS-T洗涤3次,每次5分钟,使用ECL发光检测液,Tanon 5200成像仪显影,在大约21KD处检测到目的条带。
还不够?OK,再来一张单抗实验结果——
如上图,使用抗Desmin(BM0036)(MW:54KD)鼠单克隆抗体进行的蛋白质印迹分析。在10%SDS-PAGE凝胶上,以80V(浓缩胶)/120V(分离胶)进行电泳2-3小时。在变性条件下,每个泳道的样品孔中装有50μg样品。
泳道1:大鼠骨骼肌组织裂解液,
泳道2:大鼠心肌组织裂解液,
泳道3:小鼠骨骼肌组织裂解液,
泳道4:小鼠心肌组织裂解液。
电泳后蛋白转移至PVDF膜上。在室温下,用5%脱脂牛奶/ TBS封闭膜1.5小时。将该膜与抗Desmin抗体在4℃孵育(0.5 ug / mL)过夜,然后用TBS-T洗涤3次,每次5分钟,并用羊抗小鼠IgG-HRP二抗(1:10000稀释)在室温下孵育1.5小时,然后用TBS-T洗涤3次,每次5分钟,使用ECL发光检测液,Tanon 5200成像仪显影,在大约53KD处检测到目的条带。

