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免疫浸润分析集大成者-immunedeconv

免疫浸润分析集大成者-immunedeconv 中科生信
2021-08-16
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导读:概述短暂的七夕节过后,大家是否重新投入到科研的最前线了呢?毕竟古语有云“科研无止境,只要肯攀登”。免疫浸润分

短暂的七夕节过后,大家是否重新投入到科研的最前线了呢?毕竟古语有云“科研无止境,只要肯攀登”。免疫浸润分析作为近几年肿瘤分析的一个热点内容,已经发展出了ssGSEA、Xcell和Estimate等多种算法。今天小编给大家分享的是其中的集大成者——immunedeconv,该包集成了我们常用的几种免疫浸润分析的方法,下面就跟着小编一起走进immunedeconv的世界吧。

简介

一般而言,可以使用解卷积(deconvolution)的方法评估免疫浸润。在此基础上,计算免疫浸润的方法大致分为3大类:

第一类:基于细胞标志分子的方法,核心思路基于ssGSEA。

第二类:完全解卷积的方法,纯数学建模拟合。

第三类:部分解卷积的方法,上述两种思路的结合。

影响解卷积效果的因素

基于监督去卷积的方法,依赖于参考集,样本间、样本内本身的异质性将会对结果产生影响,除此之外还有其他因素,例如:

·前处理和标准化

·对数与线性

对芯片数据取对数后会破坏线性假设,进而影响去卷积效果;RNA-seq数据的去卷积也需要符合线性假设,TPM , RSEM 或者Kallisto 可以得到更精确的细胞比例。

·多重共线性:混合物中相关细胞类型的存在

·矩阵的条件数目

·细胞周期

我们使用 immunedeconv 包来进行免疫浸润分析,该包提供了很多免疫浸润算法的支持,包括

·quantiseq

·timer

·cibersort

·cibersort_abs

·mcp_counter

·xcell

·epic

安装

该包需要从GitHub安装,可以利用以下两个命令安装。

install.packages("remotes")remotes::install_github("icbi-lab/immunedeconv")

开始

下面我们以R包immunedecon自带的dataset_racle$expr_mat作为测试数据完成以下示例。

# 导入所需R包library('dplyr')library('ggplot2')library('tidyr')library('immunedeconv')library('tibble')

查看基因表达数据的前5行

# 展示基因表达数据前5行knitr::kable(dataset_racle$expr_mat[1:5, ])

LAU125    LAU355    LAU1255    LAU1314

A1BG    0.82    0.58    0.81    0.71    

A1CF    0.00    0.01    0.00    0.00    

A2M    247.15    24.88    2307.94    20.30

A2M-AS1    1.38    0.20    2.60    0.28    

A2ML1    0.03    0.00    0.05    0.02 

Immunedeconv包支持的免疫浸润算法非常多,使用deconvolute函数 ,查看对应的方法并指定相应的免疫浸润方法。

deconvolution_methods
##  MCPcounter  EPIC  quanTIseq  xCell ##  "mcp_counter"  "epic"  "quantiseq"  "xcell" ##  CIBERSORT CIBERSORT (abs.)  TIMER ##  "cibersort"  "cibersort_abs"  "timer"

这个例子中我们使用quantiseq方法,最终我们得到一个x样品包含细胞类型富集得分的数据框。

res_quantiseq = deconvolute(dataset_racle$expr_mat, "quantiseq", tumor = TRUE)

QuanTiseq方法的得分一般可以被看做细胞类型得分,接下来利用tidyverse/ggplot2以堆叠柱状图对接轨进行可视化。

res_quantiseq %>%  gather(sample, fraction, -cell_type) %>%  # plot as stacked bar chart  ggplot(aes(x=sample, y=fraction, fill=cell_type)) +    geom_bar(stat='identity') +    coord_flip() +    scale_fill_brewer(palette="Paired") +    scale_x_discrete(limits = rev(levels(res_quantiseq)))

从图中可以看到:

·前两个样品(LAU355、LAU1314)在CD4+和B细胞中占据很多大的比例。

·最后两个样品 (LAU1255, LAU125) 在uncharacterized cells中占据很大比例。

·最后一个样品(LAU125)不包含CD8+细胞,后者往往与糟糕的预后。

下面我们在同样数据集中利用MCP-counter计算免疫浸润得分。

res_mcp_counter = deconvolute(dataset_racle$expr_mat, "mcp_counter")

MCP-counter的得分仅在样品之间具有可比性,在细胞类型之间没有。接下来我们利用散点图在样品之间进行比较。

res_mcp_counter %>%  gather(sample, score, -cell_type) %>%  ggplot(aes(x=sample, y=score, color=cell_type)) +    geom_point(size=4) +    facet_wrap(~cell_type, scales="free_x", ncol=3) +    scale_color_brewer(palette="Paired", guide=FALSE) +    coord_flip() +    theme_bw() +    theme(axis.text.x = element_text(angle = 90, vjust = 0.5, hjust=1))

·相较于quanTiseq,MCP-counter预测出B细胞在LAU355和LAU1314中相较于其他两个样品具有更高的富集分数。

·最后一个样品LAU125在CD8+细胞中具有更低的富集得分。

·Neutrophils和Monocytes两个方法结果不一致。

以上就是小编对immunedeconv的简单介绍,更多详细大家可访问https://icbi-lab.github.io/immunedeconv

END

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