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13.5分!中国团队发现三阴性乳腺癌免疫治疗耐药新机制,并提出破解思路!

13.5分!中国团队发现三阴性乳腺癌免疫治疗耐药新机制,并提出破解思路! 中科生信
2025-12-16
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导读:13.5分!中国团队发现三阴性乳腺癌免疫治疗耐药新机制,并提出破解思路!

这篇文章是20256月发表在《Experimental Hematology & Oncology》(IF:13.5)期刊上的文章《Multi-omics analyses of the heterogenous immune microenvironment in triple-negative breast cancer implicate UQCRFS1 potentiates tumor progression》。

亮点:本研究利用单细胞测序的深度,发现了具有关键功能的细胞亚群;并构建了一个兼具预后和预测免疫治疗疗效能力的创新型MCI模型,临床转化潜力大;此外,研究通过多组学数据和多层次实验,系统性地鉴定并验证了UQCRFS1作为TNBC新型促癌基因和潜在治疗靶点。

背景介绍

三阴性乳腺癌(TNBC)因其缺乏治疗靶点、侵袭性强和预后差而成为乳腺癌中最棘手的亚型。肿瘤免疫微环境(TME)在肿瘤进展和免疫治疗应答中起着决定性作用,但其在TNBC中的异质性(即细胞组成和状态的多样性)尚未被完全阐明。该研究旨在利用多组学分析(包括单细胞RNA测序、空间转录组、蛋白组学和批量转录组数据)系统解析TNBC的异质性TME,鉴定关键的细胞亚群和分子特征,并构建有效的预后模型,最终通过实验验证关键基因UQCRFS1的促癌功能。

图形摘要

本研究的设计方案与工作流程示意图展示于图1AB。研究基于来自广东省人民医院的九例初治TNBC患者自测单细胞RNA测序数据集展开深入分析,明确了八大主要细胞类型。通过CellChat算法探究了各主要细胞类型间的相互作用关系,进而对每种主要细胞类型进行亚群解析,揭示了其多样性特征。其中,研究证实高表达IL32的调节性T细胞(IL32high Treg)对肿瘤免疫逃逸具有重要影响,且与TNBC患者不良预后相关。此外,利用拷贝数变异分析识别出一个恶性上皮细胞亚群。我们进一步采用LASSO-Cox回归算法,基于恶性肿瘤细胞中筛选的五个差异表达基因(BGNSDC1IMPDH2SPINT1UQCRFS1)构建了恶性细胞指数(MCI),并在四个独立TNBC队列(GSE58812TCGA-TNBCMETABRICGSE21653)中验证了其临床意义,发现低MCI值的TNBC患者预后更佳。最终,通过系列体外和体内实验证实,敲低MCI关键基因铁硫黎簇蛋白(UQCRFS1)可有效抑制TNBC细胞的增殖与迁移能力。本研究为理解TNBC异质性提供了新的见解,有助于阐明TNBC生物学特性,并为TNBC患者预后评估提供临床指导。

主要研究结果

(一)绘制TNBC单细胞图谱并揭示关键免疫细胞亚群

为解析初治三阴性乳腺癌(TNBC)的异质性免疫微环境,研究收集了九例患者的活检肿瘤组织进行单细胞RNA测序。经过质控筛选后,最终获得92,304个细胞,并将其划分为八大主要细胞类型:B细胞、内皮细胞、上皮细胞、成纤维细胞、壁细胞、髓系细胞、浆细胞和T细胞。基于患者来源或主要细胞类型的UMAP可视化结果展示于图2AB;图2C则呈现了九例患者中八种主要细胞类型的比例分布。此外,这些细胞类型通过经典谱系标志物得以鉴定:B细胞(CD79ACD79BMS4A1)、内皮细胞(CDH5PECAM1VWFCLDN5)、上皮细胞(EPCAMCDH1KRT8KRT18)、成纤维细胞(DCNCOL1A1COL1A2)、壁细胞(RGS5ACTA2TAGLN)、髓系细胞(CD14FCN1C1QC)、浆细胞(JCHAINMZB1IGHG1)及T细胞(CD2CD3DTRACTRBC2)(图2D-F)。

通过CellChat分析进一步揭示了肿瘤微环境中各类细胞间广泛而独特的通讯网络,发现成纤维细胞与髓系细胞在相互作用数量和强度上均占据主导地位(图2G)。值得注意的是,成纤维细胞表现出最活跃的外向信号传递模式,而髓系细胞则呈现最高的内向信号接收频率,提示这两类细胞在TNBC微环境中发挥关键作用(图2H)。综上可知,TNBC的异质性微环境源于多样化的细胞类型及其间紧密的相互作用。

(二)TNBC髓系细胞特征分析

基于t-SNE算法,髓系细胞被重新划分为六个亚群:巨噬细胞、肥大细胞、单核细胞、耐受性树突状细胞(tDCs)、浆样树突状细胞(pDCs)和经典树突状细胞(cDCs)(图3A),各亚群的标志物如图3BC所示。我们进一步聚焦巨噬细胞,鉴定出四个亚群:S100A8+巨噬细胞、IL1B+巨噬细胞、FOLR2+巨噬细胞和MKI67+巨噬细胞(图3D)。通过小提琴图展示各亚群标志物的表达水平,验证了分群的准确性(图3E)。CellChat分析显示巨噬细胞各亚群间存在广泛通讯(图3F)。

进一步利用hallmark通路集进行功能通路富集分析,探索各亚群潜在的相关信号通路和生物学功能(图3G)。具体而言,FOLR2+巨噬细胞主要富集于雄激素反应、移植物排斥;IL1B+巨噬细胞富集于凋亡、缺氧、炎症反应等通路;MKI67+巨噬细胞在DNA修复、有丝分裂纺锤体、G2/M检查点等通路显著富集;S100A8+巨噬细胞则主要富集于活性氧通路、氧化磷酸化等。随后通过代谢通路分析发现,FOLR2+MKI67+巨噬细胞亚群代谢通路活性相对增强,而S100A8+IL1B+亚群代谢活性较低(图3H)。

转录因子(TF)分析显示:IL1B+巨噬细胞中CREMPDRM1RELIRF8等转录因子显著激活;MKI67+巨噬细胞以RAD21MYC为主;FOLR2+巨噬细胞中CEBPDMAFB明显上调;S100A8+巨噬细胞中CEBPBMYY1IRF2等显著高表达(图3I)。基于GSE96058MATABRIC-TNBC队列的生存分析证实,这些巨噬细胞亚群特异性转录因子均是TNBC患者总体生存的不良预后因素(图3J)。综上研究证实,TNBC肿瘤微环境中的髓系细胞(特别是巨噬细胞)在功能通路和转录因子表达方面具有显著异质性,提示大量巨噬细胞亚群与TNBC患者预后不良密切相关。

(三)TNBC中成纤维细胞与B/浆细胞的多样性

现有研究证据表明,原发性或转移性肿瘤中的成纤维细胞具有显著的适应性、可塑性与恢复力,通过参与肿瘤微环境(TME)中多种细胞群体的复杂相互作用,推动肿瘤进展。本研究对成纤维细胞进行重聚类,基于t-SNE算法明确了四个亚群(Fib_C0C3)(图4A)。热图展示了这些亚群间的差异表达基因(图4B)。CellChat分析显示,与Fib_C2Fib_C3亚群相比,Fib_C0Fib_C1亚群具有更活跃的细胞间通讯(图4C)。伪时序分析揭示了从Fib_C2亚群向其他亚群分化的独特轨迹(图4DE)。

基于KEGG数据库的功能通路富集分析表明,Fib_C0Fib_C1亚群富集了多条重要通路,包括黏着斑、肌动蛋白细胞骨架调控、吞噬体等,而Fib_C2Fib_C3亚群富集的通路相对较少(图4F)。进一步对比四个亚群的表面蛋白基因表达发现:Fib_C0Fib_C1亚群与细胞外基质(ECM)、基质金属蛋白酶(MMPs)、TGF-β、新生血管生成、收缩性、RAS及促炎症相关基因存在广泛关联;而Fib_C2亚群主要与促炎症相关(图4G)。

随后,我们鉴定出两个B细胞亚群(初始B细胞与记忆B细胞)及两个浆细胞亚群(JCHAIN+浆细胞与IGG+浆细胞)(图4H),各亚群的标志物表达特征如图4IJ所示。Monocle分析揭示了从B细胞向浆细胞分化的连续过程(图4K)。通路富集分析表明:初始B细胞与记忆B细胞主要富集于自然杀伤(NK)细胞介导的细胞毒性、T细胞受体信号通路等免疫调控通路;而JCHAIN+IGG+浆细胞则显著增强泛素介导的蛋白水解、补体与凝血级联等通路活性(图4L)。

进一步通过转录因子(TF)分析发现:浆细胞亚群中XBP1表达显著上调,而初始B细胞与记忆B细胞亚群中STAT1表达更为活跃(图4MN),这两类转录因子均是B细胞分化过程中的关键调控因子。综上所述,本研究从分化轨迹、功能通路和转录因子表达三个维度,系统阐释了TNBC肿瘤微环境中成纤维细胞与B/浆细胞的多样性特征

(四)TNBCT/NK细胞的异质性特征

T细胞与NK细胞是肿瘤微环境(TME)中的重要组成部分。我们通过t-SNE算法对T/NK细胞进行鉴定与重分类,识别出CD4+ T细胞、CD8+ T细胞、调节性T细胞(Tregs)、MKI67+ T细胞、NK细胞及NKT细胞等主要群体(图5A),其标志物表达如图5B所示。进一步分析显示,CD4+ T细胞包含三个亚型(IL7R+CXCL13+NKG7+ CD4+ T细胞),CD8+ T细胞包含六个亚型(GZMB+CXCL13+IL7R+GZMK+GNLY+NR4A2+ CD8+ T细胞),Tregs则分为IL32高表达(IL32high)与低表达(IL32low)两个亚型(图5CD)。

CellChat分析揭示了这些亚型与上皮细胞间的通讯差异:CXCL13+ CD4+ T细胞、GZMB+IL7R+ CD8+ T细胞以及IL32high Tregs与上皮细胞表现出更显著的相互作用(图5E)。为进一步评估各T/NK亚型的综合功能,研究对比了其免疫相关基因(共刺激、共抑制及功能标志物)的表达水平(图5F),并发现不同亚型在T细胞耗竭、细胞毒性、效应功能及免疫逃逸特征评分上存在显著差异(图5G)。其中,CXCL13+ CD8+ T细胞在耗竭特征中评分最高;GZMK+ CD8+ T细胞在细胞毒性及效应功能中作用最为突出;而IL32high Tregs则在免疫逃逸过程中发挥关键作用。

通过对比IL32highIL32low Tregs的功能通路差异,发现IL32high Tregs显著富集于翻译失调调控、PD-L1/PD-1检查点通路及原发性免疫缺陷等免疫失调相关通路(图5H)。基于GSE96058队列的分析进一步证实,TNBC患者中IL32high Tregs特征评分越高,其预后越差(图5I)。综上研究表明,TNBC微环境中的免疫细胞存在高度异质性,其中IL32high Tregs可能通过促进免疫逃逸导致患者不良预后。

(五)TNBC上皮细胞亚群的异质性解析

为明确TNBC上皮细胞的异质性,研究采用"inferCNV"算法区分正常上皮细胞与恶性上皮细胞,并对恶性细胞进行重聚类分析,鉴定出八个亚群(Malignant_C0C7)(图6AB)。各亚群的标志物表达特征如图6C所示。通过对比恶性细胞亚群的拷贝数变异(CNV)评分,发现Malignant_C3亚群的CNV评分显著高于其他亚群(图6D)。CellChat分析显示,Malignant_C5亚群在恶性细胞亚群间具有最广泛的相互作用(图6E)。基于GOhallmark数据库的功能富集分析表明:Malignant_C5亚群参与T细胞活化、细胞间黏附、细胞外基质组织及上皮间质转化(EMT)的调控;Malignant_C2亚群主要富集于干扰素α/γ反应通路;Malignant_C1亚群则在脂肪酸代谢、糖酵解、氧化磷酸化和活性氧通路等代谢调控中发挥潜在作用(图6FG)。进一步分析恶性细胞亚群的转录因子活性及免疫相关基因(共刺激、共抑制及功能标志物)表达发现:Malignant_C5亚群中CCAAT增强子结合蛋白家族转录因子及多种免疫调控基因表达上调;而与干扰素反应相关的关键转录因子(如STAT1IRF1)在Malignant_C2亚群中显著激活(图6HI)。综上研究表明,TNBC恶性上皮细胞各亚群通过不同的功能通路特征,可能对肿瘤微环境的演进产生重要影响。

(六)基于TNBC恶性上皮细胞标志物构建与验证MCI评分体系

为探究恶性上皮细胞中基因表达模式的临床潜力(该细胞群在单细胞RNA测序数据中显著高表达1280个基因),研究采用单因素Cox回归和LASSO算法,从TNBC患者批量转录组数据中筛选具有实际预后价值的恶性相关基因。训练集包含GSE58812TCGA-TNBC数据集,验证集则由METABRICGSE21653数据集组成。通过单因素Cox回归及重叠分析,在训练集中筛选出28个共同基因(图7AB),最终通过LASSO算法确定5个核心基因构建恶性细胞指数(MCI),其计算公式为:MCI=0.1068×BGN+0.0572×SDC1+0.0065×IMPDH2+0.1193×SPINT1+0.0200×UQCRFS1(图7C)。在所有数据集中,以MCI中位值为界将TNBC患者划分为MCI高表达组与低表达组。主成分分析显示,基于MCI的分类在训练集与验证集中均呈现良好区分度(图7D)。为直观展示数据,将MCI值标准化至0-1范围,结果显示MCI高表达组死亡患者比例可能高于低表达组(图7E)。进一步分析MCI五大关键基因的表达模式,发现这些基因在TNBC患者的MCI高表达组中均呈现上调趋势(图7F)。通过总生存期的K-M生存分析证实,在所有数据集中,MCI高表达组TNBC患者的生存率均显著低于低表达组(图7G)。综合内部训练与外部验证结果表明,MCI评分体系在监测TNBC患者生存结局方面具有重要应用潜力。

(七)MCI临床应用价值

为探究MCI的独立预后价值,研究基于年龄、肿瘤大小、阳性淋巴结数目及MCI等临床特征进行单因素与多因素Cox回归分析。森林图结果显示,在GSE58812队列中,MCI在单因素和多因素分析中均是TNBC患者不良生存的独立预后指标(图8AB)。进一步通过多因素Cox回归及逐步回归分析,构建了包含年龄、肿瘤大小和MCI的列线图模型,可预测TNBC患者2年、3年及5年总体生存率(图8C)。校准曲线验证了列线图预测生存率与实际观察值之间存在良好一致性(图8D)。决策曲线分析(DCA)评估了列线图在不同阈值概率下的临床实用性,表明该模型优于本研究涉及的所有其他预测因子(图8E)。通过计算各样本的列线图评分,发现低评分TNBC患者较高评分者具有更长的生存期,与此前发现相符(图8F)。综上所述,MCI确实是TNBC患者不良预后的关键临床指标,而包含MCI的列线图模型在预测TNBC患者预后方面展现出优异的稳定性与临床应用价值。

三阴性乳腺癌作为乳腺癌中具有高度侵袭性的亚型,其有效治疗手段十分有限,而免疫检查点阻断(ICB)疗法的出现为TNBC治疗带来了巨大潜力。为探究MCI是否与免疫治疗反应预测相关,本研究收集了GSE173839队列的转录组数据(包含接受ICB治疗[德瓦鲁单抗联合奥拉帕利]及紫杉醇治疗的TNBC患者)。通过计算该队列中每位TNBC患者的MCI值,发现对ICB治疗未达到病理完全缓解(nCR)的患者其MCI值显著高于达到病理完全缓解(pCR)的患者(图8G)。随后以MCI中位值为界将患者分为MCI高、低表达亚组,结果显示MCI高亚组中nCR患者比例显著高于低亚组(图8H)。ROC曲线分析显示曲线下面积(AUC)达0.733,证实MCI在免疫治疗反应预测中具有良好准确性(图8I)。

上述发现在我们包含7例确诊TNBC并接受新辅助ICB治疗及化疗患者的单细胞测序队列中得以验证(图8J)。值得注意的是,其中4例达到pCR状态,其余为nCR状态,UMAP图谱清晰展示了这一分布(图8K)。各主要细胞类型中MCI的分布情况如图8L所示,单细胞数据进一步揭示免疫治疗nCR组患者的累积MCI值显著高于pCR组,与前述结论高度一致(图8M)。具体而言,通过对比各主要细胞类型中不同治疗反应组别的MCI值,发现除正常上皮细胞外,nCR组在大多数细胞类型(包括恶性细胞)中均呈现显著升高的MCI值(图8N)。这些发现共同表明,MCI可作为预测TNBC患者免疫治疗不良反应的有效指标。

(八)UQCRFS1的功能验证

MCI包含的恶性相关基因中,铁硫黎簇蛋白(UQCRFS1)在TNBC中的具体机制尚不明确。为此,我们深入探讨了UQCRFS1TNBC中的表达特征及临床意义。首先,通过分析GSE76250数据集中配对癌组织与癌旁样本发现,UQCRFS1TNBC组织中表达明显增强(图9A)。随后采用qRT-PCR技术验证细胞系中的mRNA表达水平,发现相较于乳腺上皮细胞MCF-10ATNBC细胞系中UQCRFS1mRNA表达显著升高(图9B),这与前期生物信息学分析结果一致。基于FUSCC蛋白质组数据分析显示,TNBC患者组织中UQCRFS1的蛋白表达水平同样呈现上调趋势(图9C)。Western blot实验进一步在蛋白层面证实,TNBC细胞系中UQCRFS1表达显著增强(图9D)。通过分析包含TNBC患者的空间转录组(ST)数据集,发现UQCRFS1主要富集于肿瘤区域,而在正常导管区域表达较弱(图9EF)。

为深入探究UQCRFS1TNBC细胞的功能影响,研究通过在MDA-MB-231BT549细胞中使用两种siRNA敲低UQCRFS1表达(图9G),开展了一系列体外和体内功能实验。CCK-8实验显示,敲低UQCRFS1能显著抑制TNBC细胞增殖(图9H)。通过Transwell小室实验和克隆形成实验进一步发现,UQCRFS1敲低有效削弱了TNBC细胞的迁移能力与克隆形成能力(图9I-K)。为验证UQCRFS1对体内肿瘤生长的影响,研究建立了稳定敲低UQCRFS1MDA-MB-231BT549细胞及其对照细胞的异种移植模型(图9L)。结果显示,与对照组相比,敲低UQCRFS1显著抑制了移植瘤的体重增长与生长曲线(图9M-P)。这些结果共同表明UQCRFS1能增强TNBC细胞在体内外的增殖与迁移能力,提示其可能成为TNBC治疗的潜在生物标志物。

总结

本研究通过多组学整合分析,系统描绘了三阴性乳腺癌高度异质的肿瘤免疫微环境图谱,鉴定出一个关键的免疫抑制性Treg亚群,构建了一个基于恶性上皮细胞特征的预后模型,并首次深入验证了线粒体基因UQCRFS1TNBC中的促癌功能及其与免疫治疗抵抗的关联。


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中科生信是一家专业从事生物技术服务的公司,提供生物医学领域的定制化数据分析服务。公司业务有:二代测序平台、数据库搭建技术、测序个性化分析平台、以及生信分析定制化服务!致力于为客户提供“一站式”科研服务。
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