作者:张 灿 薛 磊 程 波 龙沈飞 朴香淑 臧建军
仔猪断奶存活率、生长性能与养猪生产的经济效益密不可分。仔猪断奶从采食液体饲料向固体饲料过渡,但其消化系统尚未发育完全,胃中多种消化酶活性减弱,可能引起消化吸收不良[1]。另外,饲料改变可使肠道菌群紊乱及肠道屏障受损,从而降低小肠的吸收能力,导致消化率和生长性能下降[2],严重时引起腹泻[3],甚至死亡[4]。同时,断奶仔猪的免疫系统尚在发育中,极易受到外界不良因素的刺激,产生非特异性应激综合征[5],在摄入固体饲粮后,肠道微生物群改变会诱导“断奶反应”的短暂肠道免疫反应,使宿主易感炎症,产生代谢功能障碍[6]。此外,为了提高母猪利用效率,生产中超早期断奶会导致更严重的应激综合征[7]。虽然饲用抗生素具有促生长、防腹泻、抗应激的作用,但抗生素可改变肠道菌群组成,破坏肠道环境[8],造成药物残留、细菌耐药性等负面问题,全面禁止在饲料中添加抗生素已成为强制规定[9]。因此,研发安全、高效、绿色的新型饲用抗生素替代产品迫在眉睫。作为具有替抗潜力之一的益生菌是指对宿主有益的活的微生物[10],如枯草芽孢杆菌、地衣芽孢杆菌等[11]。益生菌可分泌多种消化酶,将动物无法吸收利用的营养物质分解为小分子物质,能够维持和增强小肠绒毛的结构和功能,促进对营养物质的消化吸收,提高饲料的利用率[12-13];另外,益生菌通过增加短链脂肪酸含量或者降低肠道pH,影响肠道菌群的数量和丰度,改善肠道微生物平衡、增强仔猪肠道免疫防御能力[14],减少腹泻的发生[15-16]。陈京创[17]报道,在饲粮中添加250 g/t枯草芽孢杆菌使断奶仔猪腹泻率降低,平均日增重提高。陈为峰等[18]发现,饲粮中添加0.1%枯草芽孢杆菌,育肥猪的生长性能、养分表观消化率、肠道菌群和免疫功能得到改善。断奶仔猪采食添加了1 500 g/t地衣芽孢杆菌的饲粮,其生长性能、抗氧化能力和免疫力提高[19]。魏立民等[20]在饲粮中添加地衣芽孢杆菌,降低了断奶仔猪血清尿素氮的水平。众多研究表明,复合益生菌的作用优于单菌[21],但益生菌定植具有个体化差异,且益生菌对肠道菌群重建具有延缓作用,不同益生菌之间、益生菌与肠道菌群之间可产生互作效应,复合益生菌的效果有待进一步研究。因此,试验将探究由枯草芽孢杆菌DSM 5750、枯草芽孢杆菌DSM 27273和地衣芽孢杆菌DSM 5749组成的复合益生菌对断奶仔猪生长性能、营养物质表观消化率、血清免疫指标及肠道挥发性脂肪酸和消化酶活性的影响。
材料与方法
1.1 试验材料
复合益生菌主要成分为枯草芽孢杆菌DSM 5750、枯草芽孢杆菌DSM 27273和地衣芽孢杆菌DSM 5749,其中枯草芽孢杆菌从豆渣中分离获得,地衣芽孢杆菌于土壤中分离获得,三者的比例分别为2∶1∶1。P200组和P400组中复合益生菌活菌数分别为6.5×108、1.3×109 CFU/kg。玉米和豆粕由承德九运农牧有限公司(中国农业大学丰宁实验站)提供,其他原料均购自北京同力兴科农业科技有限公司。
1.2 试验设计
选取240头28日龄的断奶仔猪(杜×长×大),按照初始体重[(8.13±0.08) kg]随机分为3个处理,每个处理10个重复,每个重复8头仔猪。试验期31 d,以断奶开始为试验第0天,试验前期(0~14 d)各处理组饲粮中添加氧化锌,试验后期(15~31 d)不添加氧化锌,前、后期每个处理组饲粮中分别添加0(对照组)、200(P200组)、400 g/kg(P400组)的复合益生菌。试验参照NRC(2012)[22]营养需要配制,饲粮配方与营养水平见表1。
表1 试验饲粮组成及营养水平(饲喂基础)
注:1.预混料为每千克饲粮提供VA 12 000 IU、VD3 2 000 IU、VE 30 IU、VK3 30 mg、VB1 1.5 mg、VB6 3 mg、VB12 12 μg、VB2 4 mg、泛酸15 mg、烟酸40 mg、氯化胆碱400 mg、叶酸0.7 mg、生物素0.1 mg、锰4 mg、铁90 mg、铜8.8 mg、碘0.14 mg、硒0.3 mg;
2.“-”表示未添加;
3.营养水平中总能、粗蛋白、粗灰分含量为实测值,其余数值根据NRC(2012)[22]计算。
1.3 饲养管理
试验在国家饲料工程技术研究中心丰宁动物试验基地暨中国农业大学丰宁实验站(承德九运农牧有限公司)开展。采用封闭式保育舍,试验前对猪舍进行彻底清洗消毒。猪舍温度(断奶仔猪转入第1周舍内温度设定为28 ℃,之后按照每周降温约1 ℃,至第4周保持舍内温度为24 ℃左右)、相对湿度(60%~70%)可控。试验仔猪按每个组的每个重复分栏饲养于1.5 m×1.5 m×1.0 m栏内,栏内铺设塑料漏缝地板,设有不锈钢料槽与鸭嘴式饮水器,断奶仔猪全程自由采食和饮水。试验期间保持猪舍通风和清洁,按照常规管理程序进行驱虫和免疫,动物使用通过中国农业大学实验动物福利与动物实验伦理审查委员会批准(批准编号AW50903202-1-1)。
1.4 样品收集和指标测定
1.4.1 生长性能
分别于试验第0、14、31天称重,以栏为单位每天记录断奶仔猪采食量,并计算平均日增重(ADG)、平均日采食量(ADFI)和料重比(F/G)。
ADG(g)=(饲养末期体重-饲养初期体重)/饲养天数
ADFI(g)=饲养期采食量/饲养天数
F/G=总饲料消耗量(kg)/ 总增重(kg)
1.4.2 饲粮和粪便中营养物质含量的测定
试验各组添加0.25%三氧化二铬作为外源指示剂以测定营养物质表观消化率,由于三氧化二铬颜色为绿色,试验第4~5天发现排出的粪便呈绿色,说明此时断奶仔猪已开始消化代谢试验饲粮,试验第13~14天(前期)、第30~31天(后期)收集粪便样品,可保证其为采食试验饲粮后的排泄物,将前期和后期收集的全部粪便分别解冻、混合均匀,于65 ℃烘箱中干燥72 h,自然回潮24 h,结束后取约200 g样品于4 ℃保存,直至分析。化学分析前,将饲粮和粪便样品粉碎过1 mm筛,采用中华人民共和国国家标准测定样品中水分(GB/T 6435—2014)[23]、粗灰分(GB/T 6438—2007)[24]、粗蛋白(GB/T 6432—2018)[25]、粗脂肪(GB/T 6433—2006)[26]、中 性 洗 涤 纤 维(GB/T 20806—2022)[27]及铬(GB/T 13088—2006)[28]的含量,采用中华人民共和国农业行业标准测定酸性洗涤纤维(NY/T 1459—2022)[29]含量,按照国际标准ISO 9831:1998使用氧弹式测热仪(6400型,购自美国Parr公司)测定总能含量。计算饲粮营养物质表观消化率。
饲粮营养物质表观消化率(%)=[1-(A/B)×(C/D)]×100
式中:A—饲粮中铬含量(%);
B—粪便中铬含量(%);
C—粪便中某营养成分的含量(%);
D—饲粮中某营养成分的含量(%)。
1.4.3 血清中尿素氮和白细胞介素含量的测定
试验第0、14、31天09:00分别从每个重复中随机选取6头体重接近平均体重的断奶仔猪(空腹12 h),用普通无抗凝剂的真空采血管采集前腔静脉血10 mL,室温静置1.5 h后在4 ℃、3 000×g条件下离心15 min,取上层血清于-20 ℃保存待用。血清中白细胞介素-10(IL-10)和白细胞介素-1β(IL-1β)的含量使用相应的酶联免疫吸附(ELISA)试剂盒(购自美国BioLegend公司)测定,测定方法参照试剂盒说明书。使用日立7020型全自动血清生化分析仪(购自日本hitachi high-technologies corporatio公司)测定血清中尿素氮(BUN)的含量。
1.4.4 挥发性脂肪酸含量和消化酶活性的测定
试验第31天,每组屠宰6头仔猪,采集盲肠和结肠食糜于2 mL冻存管中,经液氮速冻后于-80 ℃冰箱保存,用于挥发性脂肪酸含量的测定,测定前将食糜在4 ℃下解冻并混匀,称重约0.5 g,放入10 mL聚丙烯管中,加入8 mL去离子水,超声冲击30 min后(每10 min搅拌1次),在4 ℃下15 000×g离心10 min,提取上清液稀释过滤后,将待测滤液转移至气相色谱仪样品瓶中,用ICS-3000型高效离子色谱仪(Thermo Fisher Scientific,美国)测定挥发性脂肪酸的浓度,使用电导检测法测定挥发性脂肪酸的含量。
分离胰脏于2 mL冻存管中,经液氮速冻后于-80 ℃冰箱保存,胰脏中胰淀粉酶活性采用UVVIS分光光度计法(UV1100,上海马帕达仪器有限公司,上海)测定。另取十二指肠和空肠食糜于2 mL冻存管中,液氮速冻保存于-80 ℃冰箱,使用南京建成生物工程研究所有限公司试剂盒检测肠道食糜中胰蛋白酶、糜蛋白酶活性,检测方法按照说明书。
1.5 数据统计分析
试验数据采用SPSS 24.0软件进行统计分析,利用单因素方差ANOVA检验,若各处理间差异显著,则用Tukey法进行多重比较。结果用“均值±均值标准误”表示,在统计学中,P<0.05为差异显著,P<0.10为有差异趋势。
结果与分析
2.1 复合益生菌对断奶仔猪生长性能的影响
由表2可知,与对照组相比,试验后期,P200组和P400组断奶仔猪料重比显著降低(P<0.05),试验全期,试验组料重比有下降的趋势(P<0.10);不同组断奶仔猪的平均日增重、平均日采食量在各时期均无显著差异(P>0.05)。
表2 复合益生菌对断奶仔猪生长性能的影响
注:同行数据肩标不含有相同小写字母表示差异显著(P<0.05),含有相同小写字母或无字母表示差异不显著(P>0.05);下表同。
2.2 复合益生菌对断奶仔猪营养物质表观消化率的影响
由表3可知,试验前期,各组断奶仔猪对饲粮营养物质表观消化率无显著差异(P>0.05);试验后期,与对照组相比,P400组显著提高了断奶仔猪对饲粮总能、干物质和酸性洗涤纤维的表观消化率(P<0.05);P200组显著提高了断奶仔猪对饲粮粗蛋白和中性洗涤纤维的表观消化率(P<0.05);P400组较P200组显著降低了断奶仔猪对饲粮中性洗涤纤维和酸性洗涤纤维的表观消化率(P<0.05)。
表3 复合益生菌对断奶仔猪营养物质表观消化率的影响/%
2.3 复合益生菌对断奶仔猪血清免疫指标的影响
由表4可知,饲粮中添加不同剂量的益生菌对断奶仔猪血清中尿素氮、IL-1β 和IL-10含量均无显著影响(P>0.05)。
表4 复合益生菌对断奶仔猪血清免疫指标的影响
2.4 复合益生菌对断奶仔猪肠道食糜挥发性脂肪酸含量的影响
由表5可知,各组断奶仔猪盲肠食糜中挥发性脂肪酸含量无显著差异(P>0.05),但P200组和P400组盲肠食糜中异丁酸和异戊酸较对照组有下降的趋势(P<0.10)。与对照组相比,P400组断奶仔猪结肠食糜中乙酸和异丁酸含量显著下降(P<0.05),P200组断奶仔猪结肠食糜中挥发性脂肪酸含量无显著差异(P>0.05),但P200组和P400组结肠食糜中丁酸和异戊酸有下降的趋势(P<0.10)。
表5 复合益生菌对断奶仔猪盲肠和结肠食糜挥发性脂肪酸含量的影响/(mg/g)
2.5 复合益生菌对断奶仔猪消化酶活性的影响
由表6可知,与对照组相比,P200组和P400组显著提高断奶仔猪十二指肠食糜中糜蛋白酶活性(P<0.05),显著降低断奶仔猪空肠食糜中糜蛋白酶活性(P<0.05)。P400组较P200组和对照组显著提高了空肠食糜中胰蛋白酶活性(P<0.05),P200组与P400组间十二指肠和空肠食糜中糜蛋白酶活性差异不显著(P>0.05)。各组断奶仔猪胰脏胰蛋白酶和十二指肠中胰蛋白酶活性无显著差异(P>0.05)。
表6 复合益生菌对断奶仔猪消化酶活性的影响/(U/mg)
讨论
3.1 复合益生菌对断奶仔猪生长性能的影响
应用抗生素可促进动物生长或治疗疾病,以提高动物的生产性能,但是抗生素大量使用导致机体产生耐药性,因此迫切需要开发抗生素替代品[30]。益生菌已在畜牧业广泛应用,其通过改变肠道菌群结构及比例,改善肠道健康,刺激消化酶分泌,提高机体对饲粮中营养物质的消化吸收,进而改善动物的生产性能[31]。单种菌株的添加对动物健康和生长性能具有积极作用,然而添加不同组合的菌株可能比单一菌株具有更佳的效果[32]。本试验全期中,添加不同剂量的复合益生菌相对于对照组来说,断奶仔猪平均日增重均有一定的提高,试验后期添加不同剂量的复合益生菌断奶仔猪的料重比显著下降。同样,在育肥猪饲粮中添加复合益生菌显著降低了其料重比[33];妊娠母猪采食含有益生菌的饲粮后,平均日采食量显著增加,且益生菌组仔猪初生重比对照组高[34]。由试验结果可知,添加复合益生菌对断奶仔猪生长性能有积极作用,这可能是复合益生菌与大肠杆菌和产气荚膜梭菌等有害细菌竞争定植位点,从而抑制有害菌的繁殖;另外,芽孢杆菌属通过上调紧密连接蛋白和刺激黏蛋白分泌增强肠道屏障功能[35],刺激消化酶分泌,提高肠道对饲粮中养分的消化吸收[36],除此之外,益生菌自身繁殖过程中还可产生维生素、氨基酸和促生长因子等营养物质供机体利用[37],进而改善了断奶仔猪的生长性能。
3.2 复合益生菌对断奶仔猪营养物质表观消化率的影响
营养物质表观消化率是影响动物饲料营养价值的重要因素之一。在本试验前期,添加不同剂量复合益生菌使断奶仔猪对饲粮营养物质表观消化率无显著差异;在本试验后期,与对照组相比,添加200 g/kg和400 g/kg复合益生菌显著提高了断奶仔猪对饲粮总能、干物质和酸性洗涤纤维的表观消化率,且添加200 g/kg复合益生菌使断奶仔猪对饲粮粗蛋白和中性洗涤纤维的表观消化率显著提高。有研究表明,将不同来源的牧草接种地衣芽孢杆菌和枯草芽孢杆菌,进行体外发酵后发现平均体外中性洗涤纤维的消化率显著提高[38];添加枯草芽孢杆菌组仔猪对粗纤维和酸性洗涤纤维表观消化率显著提高[39],与本研究结果一致。益生菌可产生胞外酶从而增强机体对营养物质的消化吸收[40],如地衣芽孢杆菌可产生大量蛋白酶、脂肪酶、淀粉酶和部分纤维素酶,有助于提高动物对某些营养物质的利用率[41];另外,枯草芽孢杆菌可以选择性地促进乳酸杆菌生长[42],从而使肠道pH下降,低pH有利于分解营养物质[43]。益生菌通过在肠道内定植可形成肠道屏障,以增强肠黏膜完整性和肠黏膜免疫系统的保护潜力[44],有利于仔猪对营养物质的消化吸收。然而,本研究发现在试验后期,虽然P400组与对照组相比,断奶仔猪对饲粮中性洗涤纤维的表观消化率无显著差异,但较P200组显著降低,这说明益生菌的使用效果与剂量有关,其潜在机制有待进一步探索。
3.3 复合益生菌对断奶仔猪血清免疫指标的影响
尿素氮是动物机体内蛋白质代谢的最终产物,可作为判断机体蛋白质代谢与氨基酸平衡的依据[45],也可用于判断机体蛋白质代谢状况[46]。一般情况下,血清尿素氮浓度降低表明体内氨基酸平衡状况良好,肝脏和肾脏中尿素合成减少,膳食蛋白质的利用率提高[47]。虽然本试验后期添加200 g/kg复合益生菌可显著提高粗蛋白表观消化率,但在饲粮中添加不同含量的益生菌未发现对断奶仔猪血清中尿素氮含量有显著影响。与本研究结果一致的,有研究在断奶仔猪饲粮中添加0.5%复合益生菌制剂(枯草芽孢杆菌+酵母菌),对仔猪血清尿素氮含量也无显著影响[48]。柳成东等[49]研究表明,在全价配合饲料中添加1.0×107、2.0×107 CFU/g凝结芽孢杆菌,结果同样表明,断奶仔猪血清尿素氮与对照组相比无显著差异。有较多研究表明[50-52],饲粮中氨基酸水平对血清尿素氮含量有一定影响,而本试验不论前期还是后期,为了保证单一变量原则,饲粮中只是益生菌添加水平不同,其余营养水平一致,因此不同处理组的饲粮标准回肠可消化缬氨酸水平的改变幅度小,虽然对猪的料重比有一定影响,但可能未导致蛋白质和氨基酸代谢异常[53],因此尿素氮含量无显著差异。
仔猪在断奶后,胃肠道由于未发育完全,易受到大肠杆菌等致病菌的侵染,导致微生态环境紊乱,引发腹泻等疾病[54]。断奶仔猪体内的炎性因子则可以对免疫系统进行动态调节[55],白细胞介素是由白细胞分泌的细胞因子,主要包含促炎因子IL-1β 和IL-6,通常IL-1β 能促使T淋巴细胞亚群扩张和存活,从而募集众多的IL-6激活嗜中性粒细胞功能,发挥变态反应[55];IL-6则能诱导慢性炎症反应,引发肠黏膜损伤;抑炎因子IL-4和IL-10,其一般参与B细胞活化,并调节动物机体抗体的产生和体液免疫应答[56]。Deng等[57]研究结果显示,大鼠饲粮中分别添加0.05%地衣芽孢杆菌、0.05%枯草芽孢杆菌及0.5%枯草芽孢杆菌代谢物,未显著提高血清抗炎细胞因子IL-10的含量。Cao等[58]研究表明,在断奶仔猪饲粮中添加复合益生菌(丁酸梭菌、枯草芽孢杆菌和地衣芽孢杆菌)可显著降低血清IL-1β 浓度。而本试验结果显示,饲粮中添加不同含量的益生菌对断奶仔猪血清中IL-1β和IL-10含量无显著差异。免疫细胞通过膜受体识别益生菌,膜受体接收益生菌后会激活信号通路中的关键蛋白,触发诱导细胞因子产生转录因子(如IL-10),但是益生菌与宿主存在相互作用[35],益生菌对免疫反应调节的分子和细胞机制还需要进一步研究。
3.4 复合益生菌对断奶仔猪肠道食糜挥发性脂肪酸含量的影响
后肠道细菌种类多,消化保留的时间长,是未消化碳水化合物或蛋白质发酵的主要场所,短链脂肪酸是其中主要的微生物发酵产物,短链脂肪酸通过参与抑制组蛋白脱乙酰酶和激活G蛋白偶联受体[59],调节宿主健康,为宿主提供能量;降低肠道pH从而增强对营养物质的吸收,抑制有害细菌的生长,维持肠道微生态平衡。另外,短链脂肪酸在维持胃肠上皮细胞完整性、葡萄糖稳态、脂质代谢、食欲调节和免疫功能中起着核心作用[60]。芽孢杆菌通过代谢多种复杂的膳食纤维[61],可增加产生短链脂肪酸的细菌水平[62]。有研究表明,断奶仔猪肠道中乙酸和丙酸含量的提高反映了肠道菌群对固体饲粮衍生底物的代谢适应[63]。钟晓霞等[64]发现,饲粮中添加0.1%复合益生菌(枯草芽孢杆菌、酿酒酵母、丁酸梭菌和解淀粉芽孢杆菌)使断奶仔猪盲肠中丁酸和总挥发性脂肪酸含量有上升的趋势。Huting等[65]在断奶仔猪饲粮中添加淀粉双歧杆菌和枯草芽孢杆菌,发现结肠中戊酸含量有所提升。Cao等[58]发现,饲粮中添加丁酸梭菌、枯草芽孢杆菌和地衣芽孢杆菌使断奶仔猪结肠中丙酸、丁酸和戊酸的含量显著提高。本试验显示,添加200 g/kg复合益生菌对断奶仔猪结肠食糜中挥发性脂肪酸含量无显著差异,添加200 g/kg和400 g/kg复合益生菌对断奶仔猪盲肠食糜中挥发性脂肪酸含量无显著差异。益生菌的使用效果可能与饲粮组成有关,富含纤维的饲粮在后肠发酵可以产生较高水平的挥发性脂肪酸[66],本试验所采用的饲粮中包括膨化玉米和膨化大豆,经历膨化工艺后纤维结构被破坏,导致饲粮中纤维含量较低[67],使添加的益生菌缺少可发酵的纤维底物,这可能导致本试验添加益生菌对挥发性脂肪酸无显著影响,除此之外,益生菌组合及添加量不同产生的效果也不一致。
本试验中,添加400 g/kg复合益生菌较对照组和P200组断奶仔猪结肠食糜中乙酸和异丁酸含量显著下降,与对照组相比,P200组和P400组结肠食糜中丁酸和异戊酸含量、盲肠食糜中异丁酸和异戊酸含量有下降的趋势。有研究发现,定安猪结肠糜中的短链脂肪酸浓度在采食高纤维饲粮后有所下降,其推测高纤维饲粮刺激SLC16A1的表达,提高了定安猪对挥发性脂肪酸的吸收[68]。本试验发现,试验后期添加400 g/kg复合益生菌与添加200 g/kg复合益生菌相比,断奶仔猪对中性洗涤纤维和酸性洗涤纤维的表观消化率显著下降,有较多的膳食纤维进入结肠,可能与上述推测一致。结肠食糜中短链脂肪酸的含量是动态变化的,受膳食纤维的微生物降解以及宿主吸收的影响[69]。另外,有研究表明,菌株可以促进对某些挥发性脂肪酸的吸收,也可以抑制对某些挥发性脂肪酸的吸收,主要与菌株表面起黏附作用的蛋白来调控细胞转运体表达有关[70];高水平益生菌可能从饲粮中消耗过多的能量,从而对机体产生负面影响[71]。因此,本试验结肠食糜中乙酸和异丁酸含量下降的原因是否与菌株组合后细胞转运体表达发生变化有关,或者与添加剂量有关有待研究。
3.5 复合益生菌对断奶仔猪消化酶活性的影响
蛋白质的消化过程是食物经胃蛋白酶、胰蛋白酶、糜蛋白酶分解为多肽和氨基酸,未被消化的蛋白质与消化分解的肽和氨基酸一同进入十二指肠,被胰蛋白酶和糜蛋白酶进一步分解为氨基酸,再被肠壁吸收进入血液,氨基酸随血液循环运送到全身各组织器官,大部分合成机体蛋白质,少量被脱去氨基,转化为脂肪和糖类[72]。糜蛋白酶和胰蛋白酶是丝氨酸内肽酶,糜蛋白酶用于催化色氨酸、酪氨酸、苯丙氨酸和亮氨酸C端的肽键水解,释放多肽[73],而胰蛋白酶主要专一地水解L-型精氨酸和L-型赖氨酸端的羧肽键[74]。本试验中,各组断奶仔猪胰脏和十二指肠中胰蛋白酶活性无显著差异。而在肉鸡饲粮中添加0.5%解淀粉芽孢杆菌,提高了肉鸡胰脏中胰蛋白酶活性[75];将12%复合益生菌(凝结芽孢杆菌、酵母菌和乳酸杆菌)发酵豆粕饲粮饲喂断奶仔猪,其十二指肠胰蛋白酶活性显著增加[76],由此可以发现益生菌组合的种类和添加量对消化酶活性的影响不同,本试验需进一步探究对胰蛋白酶有显著作用的菌株组合和添加量。
与对照组相比,本试验添加200 g/kg复合益生菌和400 g/kg复合益生菌显著提高了断奶仔猪十二指肠食糜中糜蛋白酶的活性,添加400 g/kg复合益生菌较添加200 g/kg复合益生菌显著提高了空肠中胰蛋白酶活性,但本试验后期,P200组断奶仔猪对饲粮粗蛋白的表观消化率显著提高,这可能是因为机体对氮的吸收代谢并不能完全由蛋白酶活性决定,还受到其他酶系、内源性氮和微生物代谢等的影响[77]。与本试验结果一致的,有研究饲喂断奶仔猪利用枯草芽孢杆菌发酵后的豆粕,发现断奶仔猪十二指肠和空肠的胰蛋白酶活性增加[78]。李悦[79]将添加解淀粉芽孢杆菌的饲粮饲喂给宫内发育迟缓的仔猪,发现其回肠胰蛋白酶活性明显高于饲喂基础饲粮的宫内发育迟缓的断奶仔猪。然而,添加200 g/kg和400 g/kg复合益生菌使空肠食糜中糜蛋白酶的活性均显著下降。胰腺分泌糜蛋白酶原,进入肠道后被小肠绒毛上的一种特有酶(称为肠肽酶)活化,才能转变为糜蛋白酶,因此空肠中糜蛋白酶活性下降可能与肠肽酶有关。
结论
饲粮中添加200 g/kg和400 g/kg复合益生菌降低了断奶仔猪料重比,提高了断奶仔猪营养物质的表观消化率、十二指肠食糜中糜蛋白酶活性;添加400 g/kg复合益生菌提高了空肠食糜胰蛋白酶活性,却降低了结肠食糜乙酸和异丁酸含量,推荐在断奶仔猪饲粮中添加200 g/kg复合益生菌。但是益生菌使用还应综合考虑动物品种、健康状况、生长阶段、饲养管理、饲粮组成、抗生素、益生菌(种类、活性、剂量和组合)及饲喂方式等因素的影响。
参考文献及更多内容详见:
饲料工业,2025,46(24):81-91
引用格式
张灿, 薛磊, 程波, 等. 复合益生菌对断奶仔猪生长性能、肠道消化功能及血清免疫指标的影响[J]. 饲料工业, 2025, 46(24): 81-91.
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